| 缩略词中英文对照表 | 第1-13页 |
| 摘要 | 第13-15页 |
| Abstract | 第15-17页 |
| 第一章 绪论 | 第17-40页 |
| ·海洋低氧研究进展 | 第17-22页 |
| ·低氧的成因 | 第17-19页 |
| ·低氧对水生生物的影响 | 第19-22页 |
| ·海洋酸化研究进展 | 第22-27页 |
| ·酸化成因及历史 | 第22-23页 |
| ·海洋酸化对海洋生物的影响 | 第23-27页 |
| ·环境雌激素EE2研究进展 | 第27-29页 |
| ·环境雌激素—EE2 | 第27-28页 |
| ·EE2对生物的影响 | 第28-29页 |
| ·海洋低氧、酸化及环境污染物的相互作用 | 第29-32页 |
| ·低氧与环境污染物联合作用 | 第30-31页 |
| ·低氧与酸化联合作用 | 第31-32页 |
| ·酸化与污染物联合作用 | 第32页 |
| ·Hepcidin及相关调控基因研究进展 | 第32-37页 |
| ·Hepcidin研究进展 | 第32-34页 |
| ·HIF-1α研究进展 | 第34-35页 |
| ·EPO研究进展 | 第35-36页 |
| ·VEGF研究进展 | 第36-37页 |
| ·研究的技术路线和目的意义 | 第37-40页 |
| ·研究的目的和意义 | 第37-39页 |
| ·技术路线图 | 第39-40页 |
| 第二章 低氧对海水青鳉和黑鲷hepcidin及相关调控基因表达影响的研究 | 第40-68页 |
| ·材料与方法 | 第40-54页 |
| ·材料 | 第40-43页 |
| ·方法 | 第43-54页 |
| ·结果与分析 | 第54-63页 |
| ·总RNA的提取 | 第54-55页 |
| ·海水青鳉VEGF基因和黑鲷HIF-1α基因的扩增和序列分析 | 第55-57页 |
| ·Real-time PCR检测健康海水青鳝和黑鲷HIF-1α mRNA的组织分布 | 第57-59页 |
| ·Real-time PCR检测低氧对OM-hep1和OM-hep2及相关调控基因表达的影响 | 第59-62页 |
| ·Real-time PCR检测低氧对黑鲷肝脏AS-hep2和AS-HIF-1α基因表达的影响 | 第62-63页 |
| ·讨论 | 第63-66页 |
| ·低氧刺激实验内参基因的选择 | 第63页 |
| ·健康海水青鳉和黑鲷HIF-1α mRNA的组织分布 | 第63-64页 |
| ·低氧刺激海水青鳉和黑鲷hepcidin及相关调控基因的表达变化 | 第64-66页 |
| ·小结 | 第66-68页 |
| 第三章 低氧和EE2对海水青鳉hepcidin及相关调控基因表达影响的研究 | 第68-77页 |
| ·材料与方法 | 第68-72页 |
| ·材料 | 第68-70页 |
| ·方法 | 第70-72页 |
| ·结果与分析 | 第72-74页 |
| ·Real-time PCR检测低氧和EE2刺激下OM-hep1和OM-hep2及相关调控基因的表达变化 | 第72-74页 |
| ·讨论 | 第74-75页 |
| ·低氧和EE2刺激下OM-hep1和OM-hep2及相关调控基因的表达变化 | 第74-75页 |
| ·小结 | 第75-77页 |
| 第四章 酸化条件下海水青鳉各发育阶段OM-hep1、OM-hep2和OM-CYP1A表达变化的研究 | 第77-87页 |
| ·材料与方法 | 第77-81页 |
| ·材料 | 第77-79页 |
| ·方法 | 第79-81页 |
| ·结果与分析 | 第81-83页 |
| ·实时荧光定量分析酸化条件下OM-hep1、OM-hep2和OM-CYP1A基因的表达变化 | 第81-83页 |
| ·讨论 | 第83-85页 |
| ·酸化条件下OM-hep1、OM-hep2和OM-CYP1A基因的表达变化 | 第83-85页 |
| ·小结 | 第85-87页 |
| 结论与展望 | 第87-89页 |
| 参考文献 | 第89-112页 |
| 在学期间参加的科研项目及成果 | 第112-113页 |
| 致谢 | 第113页 |
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