摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
第一章 绪论 | 第14-24页 |
1.1 邻苯二甲酸酯类化合物及其在环境中的分布概述 | 第14-17页 |
1.1.1 邻苯二甲酸酯类化合物简介 | 第14-15页 |
1.1.2 PAEs在水体及底泥中的分布 | 第15-16页 |
1.1.3 PAEs在土壤中的分布 | 第16-17页 |
1.1.4 PAEs在大气中分布 | 第17页 |
1.2 邻苯二甲酸酯类污染物的危害 | 第17-18页 |
1.2.1 对食品安全的危害 | 第18页 |
1.2.2 对人体及动物的危害 | 第18页 |
1.3 邻苯二甲酸酯类污染物的去除技术 | 第18-19页 |
1.3.1 物理处理 | 第18-19页 |
1.3.2 化学处理 | 第19页 |
1.3.3 微生物修复 | 第19页 |
1.4 邻苯二甲酸酯类污染物的生物降解研究 | 第19-22页 |
1.4.1 单菌降解PAEs | 第19-21页 |
1.4.2 菌群降解PAEs | 第21页 |
1.4.3 好氧生物降解机制 | 第21-22页 |
1.4.4 厌氧生物降解 | 第22页 |
1.5 研究目的和意义 | 第22-24页 |
第二章 DEHP降解菌群驯化及其降解特性的研究 | 第24-42页 |
2.1 引言 | 第24页 |
2.2 实验材料和方法 | 第24-30页 |
2.2.1 主要仪器设备 | 第24-25页 |
2.2.2 培养基及试剂 | 第25页 |
2.2.3 DEHP降解菌群的梯度驯化 | 第25页 |
2.2.4 菌悬液的制备 | 第25页 |
2.2.5 细菌生长量的测定 | 第25页 |
2.2.6 PAEs培养液的配制 | 第25-26页 |
2.2.7 SD-1降解曲线的测定及传代降解效率的测定 | 第26页 |
2.2.8 DEHP降解菌群的生理学特征 | 第26页 |
2.2.9 菌群SD-1的降解底物广谱性 | 第26页 |
2.2.10 PAEs的测定方法 | 第26-27页 |
2.2.11 SD-1群落结构分析 | 第27-28页 |
2.2.12 GC测定DEHP中间代谢产物 | 第28页 |
2.2.13 菌群SD-1宏基因组学研究 | 第28-30页 |
2.3 实验结果与讨论 | 第30-40页 |
2.3.1 菌群SD-1的降解曲线及稳定性的判断 | 第30-31页 |
2.3.2 环境因素对菌群SD-1降解DEHP效果的影响 | 第31-34页 |
2.3.3 菌群SD-1的降解底物谱 | 第34页 |
2.3.4 SD-1群落结构分析 | 第34-35页 |
2.3.5 代谢产物的测定 | 第35-36页 |
2.3.6 宏基因组测序结果分析 | 第36-40页 |
2.4 小结 | 第40-42页 |
第三章 DEHP降解菌群中功能单菌的分离及其降解特性研究 | 第42-53页 |
3.1 引言 | 第42页 |
3.2 实验材料和方法 | 第42-45页 |
3.2.1 主要仪器 | 第42页 |
3.2.2 培养基 | 第42-43页 |
3.2.3 功能菌株的分离鉴定 | 第43-44页 |
3.2.4 菌悬液的配制 | 第44页 |
3.2.5 功能菌株对DEHP的降解 | 第44页 |
3.2.6 功能菌株对PA的降解 | 第44页 |
3.2.7 JM-1及KJ-2生长曲线的测定 | 第44页 |
3.2.8 GC-MS测定JM-1代谢产物 | 第44-45页 |
3.2.9 高通量测序分析SD-P菌群结构 | 第45页 |
3.3 实验结果及讨论 | 第45-51页 |
3.3.1 DEHP降解菌分离及降解研究 | 第45-49页 |
3.3.2 菌群SD-1中可降解PA菌株的分离鉴定及降解特性研究 | 第49-51页 |
3.3.3 菌群SD-P菌群组成分析 | 第51页 |
3.4 小结 | 第51-53页 |
第四章 DMP高效降解菌的分离鉴定及降解特性的研究 | 第53-71页 |
4.1 引言 | 第53页 |
4.2 实验材料和方法 | 第53-60页 |
4.2.1 主要实验仪器 | 第53页 |
4.2.2 培养基及试剂 | 第53-54页 |
4.2.3 DMP降解菌分离、纯化及鉴定 | 第54-55页 |
4.2.4 细菌生长量的确定 | 第55页 |
4.2.5 菌悬液的制备 | 第55页 |
4.2.6 PAEs培养液的配制 | 第55页 |
4.2.7 DMP降解特性研究 | 第55-56页 |
4.2.8 DMP及其代谢产物的测定方法 | 第56-57页 |
4.2.9 SDS-PAGE检测差异蛋白 | 第57-58页 |
4.2.10 DMP降解相关基因的扩增 | 第58页 |
4.2.11 实时定量PCR(Real-time quantitative PCR,RT-qPCR) | 第58-60页 |
4.3 实验结果与讨论 | 第60-70页 |
4.3.1 DMP降解菌DB-7的分离鉴定 | 第60-61页 |
4.3.2 菌株以DMP为唯一碳源的生长及降解试验 | 第61-62页 |
4.3.3 不同pH对DMP降解及菌体生长的影响 | 第62-63页 |
4.3.4 不同培养温度对DMP降解的影响 | 第63页 |
4.3.5 不同接种量对DMP降解的影响 | 第63-64页 |
4.3.6 不同初始浓度下DB-7的降解动力学 | 第64-65页 |
4.3.7 DB-7对PA的降解 | 第65页 |
4.3.8 不同PAEs对DB-7生长的影响 | 第65-66页 |
4.3.9 代谢途径分析 | 第66-67页 |
4.3.10 SDS-PAGE蛋白电泳结果 | 第67-69页 |
4.3.11 相关降解基因的扩增及比对 | 第69页 |
4.3.12 pht基因的实时定量PCR分析 | 第69-70页 |
4.4 小结 | 第70-71页 |
第五章 结论和展望 | 第71-73页 |
5.1 主要结论 | 第71页 |
5.2 展望 | 第71-73页 |
参考文献 | 第73-79页 |
致谢 | 第79-81页 |
发表论文 | 第81页 |