| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 本文所用缩略词及中文对照 | 第7-10页 |
| 1 引言 | 第10-14页 |
| 1.1 干旱胁迫严重影响作物生长发育 | 第10页 |
| 1.2 植物的抗旱性及其抗旱机制 | 第10-11页 |
| 1.2.1 植物抵御干旱胁迫的形态学机制 | 第10-11页 |
| 1.2.2 植物抵御干旱胁迫的生理生化机制 | 第11页 |
| 1.3 干旱胁迫与植物细胞活性氧 | 第11-12页 |
| 1.3.1 植物细胞活性氧及其作用 | 第11-12页 |
| 1.3.2 植物细胞活性氧清除机制 | 第12页 |
| 1.4 抗坏血酸过氧化物酶与植物活性氧清除 | 第12-13页 |
| 1.5 本研究目的意义 | 第13-14页 |
| 2 材料与方法 | 第14-26页 |
| 2.1 试验材料 | 第14页 |
| 2.1.1 供试大豆品种 | 第14页 |
| 2.1.2 农杆菌菌株与表达载体 | 第14页 |
| 2.1.3 试剂 | 第14页 |
| 2.1.4 试验所用仪器 | 第14页 |
| 2.2 试验方法 | 第14-26页 |
| 2.2.1 大肠杆菌中pCambia3301-OsAPX2 重组质粒提取 | 第14-15页 |
| 2.2.2 Os APX2 扩增片段的回收 | 第15页 |
| 2.2.3 Os APX2 重组质粒转化大肠杆菌 | 第15页 |
| 2.2.4 Os APX2 重组质粒转化农杆菌菌株 | 第15-16页 |
| 2.2.5 pBI121-Os APX2::GUS、pCamA-OsAPX2::GFP融合表达载体构建 | 第16页 |
| 2.2.6 发根农杆菌K599 介导大豆遗传转化 | 第16-17页 |
| 2.2.7 根癌农杆菌介导大豆遗传转化 | 第17-18页 |
| 2.2.8 花粉管通道技术转化大豆 | 第18-19页 |
| 2.2.9 大豆基因组DNA提取 | 第19页 |
| 2.2.10 转OsAPX2 大豆毛状根与再生植株的检测 | 第19-20页 |
| 2.2.11 大豆叶片RNA提取 | 第20页 |
| 2.2.12 大豆转基因植株RT-PCR及qPCR检测 | 第20-22页 |
| 2.2.13 不同大豆转基因株系的抗坏血酸过氧化物酶活性检测 | 第22-23页 |
| 2.2.14 转OsAPX2 大豆毛状根的抗旱性分析 | 第23页 |
| 2.2.15 转OsAPX2 大豆幼苗的抗旱性分析 | 第23-26页 |
| 3 结果与分析 | 第26-39页 |
| 3.1 发根农杆菌介导OSAPX2 转化大豆及其功能分析 | 第26-30页 |
| 3.1.1 融合表达载体pBI121-OsAPX2::GUS与pCamA-OsAPX2::GFP的构建 | 第26-27页 |
| 3.1.2 转pBI121-OsAPX2::GUS、pCamA-OsAPX2::GFP大豆毛状根获得 | 第27-29页 |
| 3.1.3 转基因大豆毛状根中OsAPX2 功能分析 | 第29-30页 |
| 3.2 根癌农杆菌介导转OSAPX2 基因大豆获得及其功能分析 | 第30-38页 |
| 3.2.1 转OsAPX2 大豆T0阳性植株的获得 | 第30-32页 |
| 3.2.2 转OsAPX2 基因T1植株获得及检测 | 第32页 |
| 3.2.3 不同转OsAPX2 大豆株系的OsAPX2 表达量分析 | 第32-34页 |
| 3.2.4 转OsAPX2 大豆株系苗期抗旱性分析 | 第34-37页 |
| 3.2.5 转OsAPX2 大豆株系成熟期产量相关性状分析 | 第37-38页 |
| 3.3 花粉管通道转化OSAPX2 大豆抗旱新种质的获得 | 第38-39页 |
| 4. 讨论 | 第39-42页 |
| 4.1 发根与根癌农杆菌在研究基因功能方面的应用 | 第39页 |
| 4.2 抗坏血酸过氧化物酶基因与植物的耐逆性 | 第39-40页 |
| 4.3 草丁膦筛选标记在转基因植物中的应用 | 第40页 |
| 4.4 目标性状表现优异的转基因新种质创制 | 第40-42页 |
| 5 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-48页 |
| 附录 | 第48-51页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第51-52页 |
| 作者简历 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
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