摘要 | 第4-8页 |
ABSTRACT | 第8-12页 |
主要缩略语中英文索引 | 第15-17页 |
第1章 绪论 | 第17-23页 |
1.1 立题依据 | 第17-23页 |
1.1.1 国内外研究现状 | 第17-20页 |
1.1.2 科学问题 | 第20-23页 |
第2章 实验材料 | 第23-27页 |
2.1 主要实验试剂 | 第23-25页 |
2.2 MICRORNA公共数据库及在线软件 | 第25页 |
2.3 主要实验器材与实验仪器 | 第25-27页 |
第3章 实验方法 | 第27-35页 |
3.1 生物信息学预测 | 第27-28页 |
3.1.1 查询MIR-182 成熟序列及基因定位、保守性等信息 | 第27页 |
3.1.2 Target Scans:micro RNA靶基因预测 | 第27页 |
3.1.3 micro RNA.org预测 | 第27-28页 |
3.1.4 RNAhybrid计算miR-182 与HDAC93’ UTR结合情况 | 第28页 |
3.2 细胞培养 | 第28-29页 |
3.3 细胞换液 | 第29-30页 |
3.4 实时定量PCR(REAL-TIME QUANTITATIVE PCR)分析 | 第30页 |
3.5 细胞蛋白抽提与蛋白质印迹检测(WESTERN BLOTTING) | 第30-31页 |
3.6 小分子干扰RNA(SIRNA)转染 | 第31页 |
3.7 双荧光素酶报告基因构建与分析 | 第31-32页 |
3.8 LPL活性检测 | 第32页 |
3.9 HDAC9活性检测 | 第32-33页 |
3.10 酶联免疫吸附剂测定法 | 第33页 |
3.11 高效液相色谱法(HPLC) | 第33页 |
3.12 统计分析 | 第33-35页 |
第4章 实验结果 | 第35-53页 |
4.1 生物信息学预测结果 | 第35-37页 |
4.2 MIR-182 与HDAC9之间的特异性结合作用 | 第37-39页 |
4.3 MIR-182 下调THP-1 源性巨噬细胞HDAC9表达 | 第39-43页 |
4.4 MIR-182 上调THP-1 源性巨噬细胞LPL表达及活性 | 第43-48页 |
4.5 MIR-182 加重THP-1 源性巨噬细胞脂质蓄积 | 第48-49页 |
4.6 MIR-182 促进THP-1 源性巨噬细胞炎症因子表达 | 第49-53页 |
第5章 讨论 | 第53-57页 |
第6章 结论 | 第57-59页 |
参考文献 | 第59-67页 |
文献综述 | 第67-83页 |
参考文献 | 第77-83页 |
攻读学位期间发表论文 | 第83-85页 |
致谢 | 第85-87页 |
附件 | 第87页 |