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蛹虫草SU5-01胞外多糖与胞内锗多糖的提取及其抗氧化活性 |
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| 中文摘要 | 第1-10页 | | Abstract | 第10-12页 | | 1 前言 | 第12-22页 | | ·食药用真菌多糖 | 第12-18页 | | ·食药用真菌研究现状 | 第12页 | | ·真菌多糖在生物学中的重要地位 | 第12页 | | ·产真菌多糖液体培养条件优化 | 第12-13页 | | ·真菌多糖的提取 | 第13-14页 | | ·真菌多糖的分离纯化 | 第14页 | | ·真菌多糖的纯度鉴定 | 第14-15页 | | ·真菌多糖的结构分析 | 第15页 | | ·真菌多糖的生物学功能 | 第15-18页 | | ·真菌多糖开发及应用 | 第18页 | | ·微量元素锗 | 第18页 | | ·蛹虫草多糖 | 第18-21页 | | ·蛹虫草多糖研究现状 | 第19-20页 | | ·蛹虫草多糖的药用价值 | 第20-21页 | | ·蛹虫草多糖产品的开发 | 第21页 | | ·本研究的目的和意义 | 第21-22页 | | 2 材料与方法 | 第22-37页 | | ·供试菌种 | 第22页 | | ·培养基 | 第22页 | | ·斜面种子培养基 | 第22页 | | ·PDA加富培养基 | 第22页 | | ·液体种子培养基 | 第22页 | | ·液体发酵培养基 | 第22页 | | ·优化碳源的培养基 | 第22页 | | ·优化氮源的培养基 | 第22页 | | ·主要仪器设备及试剂 | 第22-24页 | | ·主要仪器设备 | 第22-23页 | | ·主要试剂 | 第23-24页 | | ·试验方法 | 第24-37页 | | ·蛹虫草的液体培养 | 第24页 | | ·蛹虫草的富锗液体培养 | 第24页 | | ·菌丝体生物量(dry cell weight,DCW)的测定 | 第24-25页 | | ·菌丝体富锗率测定：原子吸收分光光度法 | 第25-26页 | | ·蛹虫草EPS及IGPS的提取及含量测定 | 第26-28页 | | ·产蛹虫草锗多糖(IGPS)的培养基配方优化 | 第28页 | | ·蛹虫草EPS及IGPS的提取优化 | 第28-30页 | | ·蛹虫草EPS及IGPS的体外抗氧化活性测定 | 第30-31页 | | ·蛹虫草EPS及IGPS的体内抗氧化活性测定 | 第31-36页 | | ·锗多糖(IGPS)的分离纯化 | 第36-37页 | | 3 结果与分析 | 第37-57页 | | ·产蛹虫草锗多糖(IGPS)的培养基配方优化 | 第37-40页 | | ·单因子试验 | 第37-39页 | | ·正交优化试验 | 第39-40页 | | ·蛹虫草EPS及IGPS的提取优化 | 第40-48页 | | ·EPS的提取优化 | 第40-44页 | | ·IGPS的提取优化 | 第44-48页 | | ·蛹虫草EPS及IGPS的抗氧化活性检测 | 第48-57页 | | ·蛹虫草EPS的体外抗氧化活性 | 第48-50页 | | ·蛹虫草EPS的体内抗氧化活性 | 第50-52页 | | ·蛹虫草IGPS的体外抗氧化活性 | 第52-53页 | | ·蛹虫草IGPS的体内抗氧化活性 | 第53-56页 | | ·锗多糖(IGPS)分离纯化 | 第56-57页 | | 4 讨论 | 第57-60页 | | 5 结论 | 第60-62页 | | 参考文献 | 第62-67页 | | 致谢 | 第67-68页 | | 攻读学位期间发表论文情况 | 第68页 |
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论文编号BS1894013，这篇论文共68页
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