| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-20页 |
| 研究背景、现状 | 第15-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-20页 |
| 一、MDS患者成骨细胞数量与功能的变化 | 第20-38页 |
| 1.1 对象和方法 | 第20-26页 |
| 1.1.1 实验对象 | 第20-22页 |
| 1.1.2 实验试剂 | 第22-23页 |
| 1.1.3 实验仪器 | 第23-24页 |
| 1.1.4 实验方法 | 第24-26页 |
| 1.1.5 统计学方法 | 第26页 |
| 1.2 结果 | 第26-34页 |
| 1.2.1 体外培养成骨细胞的细胞形态 | 第26-27页 |
| 1.2.2 生长曲线及倍增时间 | 第27-28页 |
| 1.2.3 ALP活性检测 | 第28页 |
| 1.2.4 Ⅰ型胶原抗体免疫组化染色 | 第28页 |
| 1.2.5 VonKossa's钙染色 | 第28-29页 |
| 1.2.6 MDS患者骨髓中成骨祖细胞比例 | 第29-30页 |
| 1.2.7 体外培养的成骨细胞数 | 第30-31页 |
| 1.2.8 体外培养成骨细胞中OCN~+CD34~-LIN~-细胞比例 | 第31-32页 |
| 1.2.9 MDS患者OCN~+CD34~-LIN~-细胞比例与骨髓原始细胞数及外周血细胞计数之间的相关性 | 第32-34页 |
| 1.2.10 体外培养的成骨细胞中BMP-2及OPG的mRNA表达量 | 第34页 |
| 1.3 讨论 | 第34-37页 |
| 1.4 结论 | 第37-38页 |
| 二、检测MDS患者成骨细胞对骨髓微环境的影响 | 第38-52页 |
| 2.1 对象和方法 | 第38-42页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第38-39页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第39-40页 |
| 2.1.3 主要实验材料、仪器 | 第40页 |
| 2.1.4 实验方法 | 第40-42页 |
| 2.1.5 统计学方法 | 第42页 |
| 2.2 结果 | 第42-48页 |
| 2.2.1 干祖细胞培养,集落形态 | 第42-43页 |
| 2.2.2 干祖细胞培养,集落计数 | 第43-44页 |
| 2.2.3 混合培养后,CD34~+细胞凋亡率 | 第44-45页 |
| 2.2.4 混合培养后,CD34~+中LSC比例 | 第45-46页 |
| 2.2.5 正常骨髓及分组混合培养HES、CyclinD1的表达 | 第46-48页 |
| 2.3 讨论 | 第48-50页 |
| 2.4 结论 | 第50-52页 |
| 三、MDS患者成骨细胞相关信号通路的变化 | 第52-70页 |
| 3.1 对象和方法 | 第52-60页 |
| 3.1.1 实验对象 | 第52-53页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第53-55页 |
| 3.1.3 主要实验仪器 | 第55页 |
| 3.1.4 实验步骤 | 第55-60页 |
| 3.1.5 统计学方法 | 第60页 |
| 3.2 实验结果 | 第60-66页 |
| 3.2.1 MDS患者成骨细胞中Jagged1的表达 | 第60-61页 |
| 3.2.2 MDS患者成骨细胞中RANKL的表达量 | 第61-62页 |
| 3.2.3 MDS患者骨髓上清及成骨细胞培养液中的TGF-β含量 | 第62-63页 |
| 3.2.4 MDS患者成骨细胞中HES1、CyclinD1的表达量 | 第63-64页 |
| 3.2.5 MDS患者成骨细胞中加入DAPT(Notch通路抑制剂)HES1、CyclinD1的表达量 | 第64-65页 |
| 3.2.6 Western Blot免疫印迹法检测MDS患者成骨细胞β-Catenin/磷酸化β-Catenin蛋白表达水平 | 第65-66页 |
| 3.3讨论 | 第66-68页 |
| 3.4结论 | 第68-70页 |
| 全文结论 | 第70-71页 |
| 论文创新点 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-81页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第81-82页 |
| 综述 | 第82-106页 |
| 综述参考文献 | 第93-106页 |
| 致谢 | 第106-108页 |
| 个人简历 | 第108页 |
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