| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-36页 |
| 引言 | 第13页 |
| 1.1 高温对植物生理状态的影响 | 第13-18页 |
| 1.1.1 高温对细胞内氧化还原状态的影响 | 第13-14页 |
| 1.1.2 高温对蛋白代谢的影响 | 第14-16页 |
| 1.1.3 高温对光合作用的影响 | 第16-18页 |
| 1.2 高温胁迫对小麦生长以及农艺性状的影响 | 第18-21页 |
| 1.2.1 高温对旗叶的影响 | 第18-19页 |
| 1.2.2 高温对生长速率和灌浆过程的影响 | 第19页 |
| 1.2.3 高温对穗粒数和粒重的影响 | 第19-21页 |
| 1.2.4 高温对品质的影响 | 第21页 |
| 1.3 小麦田间耐热避热管理措施 | 第21-24页 |
| 1.3.1 小麦耐热性评估以及品种选育 | 第22-23页 |
| 1.3.1.1 直接鉴定法 | 第22页 |
| 1.3.1.2 间接鉴定法 | 第22-23页 |
| 1.3.2 田间管理措施 | 第23-24页 |
| 1.3.2.1 选用较耐热的小麦品种 | 第23页 |
| 1.3.2.2 水肥管理 | 第23页 |
| 1.3.2.3 栽培和耕作技术 | 第23页 |
| 1.3.2.4 使用化学试剂 | 第23-24页 |
| 1.4 高温胁迫下植物的组学研究 | 第24-29页 |
| 1.4.1 高温胁迫下植物的转录组研究 | 第24-26页 |
| 1.4.2 高温胁迫下基因可变剪接的研究 | 第26-27页 |
| 1.4.3 高温胁迫下植物蛋白组的研究 | 第27-29页 |
| 1.5 植物响应高温胁迫的分子生物学基础 | 第29-34页 |
| 1.5.1 高温胁迫下植物细胞内的氧化还原状态调控 | 第29-30页 |
| 1.5.2 高温胁迫下植物的蛋白质量控制 | 第30-33页 |
| 1.5.3 HSF介导的热信号传导途径 | 第33-34页 |
| 1.6 立项依据以及研究内容 | 第34-36页 |
| 1.6.1 立项依据 | 第34-35页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第35-36页 |
| 1.6.2.1 热胁迫下小麦旗叶蛋白组学分析 | 第35页 |
| 1.6.2.2 HSP90全基因组分析 | 第35-36页 |
| 第二章 小麦灌浆期旗叶响应高温胁迫的蛋白组学分析 | 第36-68页 |
| 2.1 试验材料和方法 | 第36-43页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第36页 |
| 2.1.2 材料种植与热处理 | 第36-37页 |
| 2.1.3 生理指标测定 | 第37-38页 |
| 2.1.3.1 旗叶叶绿素含量测定 | 第37页 |
| 2.1.3.2 旗叶TBARS含量测定 | 第37页 |
| 2.1.3.3 二氨基联苯胺染色 | 第37-38页 |
| 2.1.4 蛋白质组学分析 | 第38-40页 |
| 2.1.4.1 旗叶总蛋白质的提取 | 第38页 |
| 2.1.4.2 蛋白酶解以及iTRAQ标记 | 第38页 |
| 2.1.4.3 HPLC分级 | 第38页 |
| 2.1.4.4 质谱分析 | 第38-39页 |
| 2.1.4.5 数据库搜索 | 第39页 |
| 2.1.4.6 生物信息学分析 | 第39-40页 |
| 2.1.4.7 富集分析 | 第40页 |
| 2.1.5 实时荧光定量PCR | 第40-43页 |
| 2.1.5.1 小麦叶片RNA提取 | 第40页 |
| 2.1.5.2 cDNA第一链合成 | 第40-41页 |
| 2.1.5.3 反转录反应 | 第41页 |
| 2.1.5.4 实时荧光定量PCR(qRT-PCR) | 第41-43页 |
| 2.2 结果与分析 | 第43-64页 |
| 2.2.1 热胁迫对小麦旗叶生理状态的影响 | 第43-45页 |
| 2.2.2 旗叶蛋白组学分析结果概述 | 第45-52页 |
| 2.2.2.1 代谢过程 | 第47-49页 |
| 2.2.2.2 蛋白代谢过程 | 第49-50页 |
| 2.2.2.3 细胞结构 | 第50页 |
| 2.2.2.4 胁迫响应 | 第50-51页 |
| 2.2.2.5 光合作用 | 第51-52页 |
| 2.2.2.6 运输蛋白 | 第52页 |
| 2.2.2.7 其他蛋白 | 第52页 |
| 2.2.3 热响应蛋白的功能富集分析 | 第52-56页 |
| 2.2.3.1 GO生物学过程富集分析 | 第53-55页 |
| 2.2.3.2 KEGG途径富集分析 | 第55页 |
| 2.2.3.3 蛋白结构域富集分析 | 第55-56页 |
| 2.2.4 热胁迫对小麦旗叶细胞内代谢过程的影响 | 第56-61页 |
| 2.2.4.1 热胁迫对蛋白合成、折叠、降解的影响 | 第56-57页 |
| 2.2.4.2 热胁迫对小麦旗叶细胞内氧化还原状态调控的影响 | 第57-59页 |
| 2.2.4.3 热胁迫对光合作用和叶绿素合成的影响 | 第59-61页 |
| 2.2.5 热胁迫对光合作用相关基因转录表达的影响 | 第61-64页 |
| 2.3 讨论 | 第64-68页 |
| 2.3.1 高温胁迫下小麦旗叶需要合成更多的分子伴侣以保护底物 | 第65页 |
| 2.3.2 GST和TRX可能在ROS清除过程中发挥重要作用 | 第65-66页 |
| 2.3.3 热对光合作用的影响是多方面的 | 第66-68页 |
| 第三章 热响应关键基因HSP90的全基因组分析 | 第68-100页 |
| 3.1 试验材料和方法 | 第68-71页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第68页 |
| 3.1.2 材料种植与热处理 | 第68页 |
| 3.1.3 小麦全基因组HSP90的鉴定 | 第68-69页 |
| 3.1.4 进化树构建 | 第69页 |
| 3.1.5 基因结构以及保守模块分析 | 第69页 |
| 3.1.6 HSP90表达模式分析 | 第69页 |
| 3.1.7 HSP90转录本鉴定以及可变剪接分析 | 第69-71页 |
| 3.2 结果与分析 | 第71-98页 |
| 3.2.1 小麦基因组编码18个HSP90蛋白 | 第71-76页 |
| 3.2.2 HSP90保守模块以及基因结构分析 | 第76-81页 |
| 3.2.3 HPS90在基因层面的热响应模式 | 第81-83页 |
| 3.2.4 三联体中不同基因的表达模式 | 第83-84页 |
| 3.2.5 HSP90在热胁迫下转录本以及可变剪接事件鉴定 | 第84-89页 |
| 3.2.6 HSP90转录本在热胁迫下的丰度以及响应模式 | 第89-96页 |
| 3.2.7 热胁迫下HSP90调控水平分析 | 第96-98页 |
| 3.3 讨论 | 第98-100页 |
| 第四章 研究结论 | 第100-101页 |
| 4.1 高温显著影响灌浆期小麦旗叶的代谢途径 | 第100页 |
| 4.2 高温对小麦的影响展现出热累加效应 | 第100页 |
| 4.3 高温胁迫下小麦HSP90s表现出复杂的响应和调控方式 | 第100-101页 |
| 参考文献 | 第101-121页 |
| 附录 | 第121-144页 |
| 致谢 | 第144-145页 |
| 作者简介 | 第145页 |
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