| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 縮略语索引 | 第14-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-33页 |
| 1.1 药物成瘾 | 第16-21页 |
| 1.1.1 药物成瘾简介 | 第16页 |
| 1.1.2 药物成瘾的机制 | 第16-20页 |
| 1.1.3 吗啡 | 第20-21页 |
| 1.2 硫氧还蛋白 | 第21-26页 |
| 1.2.1 硫氧还蛋白简介 | 第21-22页 |
| 1.2.2 硫氧还蛋白的生物学功能 | 第22-24页 |
| 1.2.3 硫氧还蛋白与药物成瘾 | 第24-26页 |
| 1.3 CDK5 | 第26-28页 |
| 1.3.1 CDK5简介 | 第26-27页 |
| 1.3.2 CDK5与药物成瘾 | 第27-28页 |
| 1.4 CREB/p-CREB | 第28-29页 |
| 1.4.1 CREB/p-CREB简介 | 第28-29页 |
| 1.4.2 CREB/p-CREB与药物成瘾 | 第29页 |
| 1.5 蛋白免疫印迹 | 第29-31页 |
| 1.5.1 蛋白免疫印迹原理 | 第29-31页 |
| 1.5.2 蛋白质免疫印记基本操作流程 | 第31页 |
| 1.6 本论文研究的目的及意义 | 第31-33页 |
| 第二章 吗啡对硫氧还蛋白表达的影响及其信号通路研究 | 第33-49页 |
| 2.1 引言 | 第33-34页 |
| 2.2 实验方案 | 第34页 |
| 2.3 实验材料 | 第34-39页 |
| 2.3.1 实验细胞及药物 | 第34页 |
| 2.3.2 主要试剂 | 第34-36页 |
| 2.3.3 主要仪器设备 | 第36-37页 |
| 2.3.4 主要试剂的配制 | 第37-39页 |
| 2.4 实验方法 | 第39-43页 |
| 2.4.1 细胞培养 | 第39-40页 |
| 2.4.2 细胞排板与药物刺激 | 第40页 |
| 2.4.3 提取细胞总蛋白 | 第40-41页 |
| 2.4.4 蛋白免疫印迹 | 第41-43页 |
| 2.4.5 统计学处理 | 第43页 |
| 2.5 实验结果 | 第43-46页 |
| 2.5.1 吗啡对Trx最佳作用浓度的确定 | 第43-44页 |
| 2.5.2 MK-801阻断了吗啡对硫氧还蛋白的诱导 | 第44-45页 |
| 2.5.3 KN-62阻断了吗啡对硫氧还蛋白表达的诱导 | 第45-46页 |
| 2.5.4 PD98059阻断了吗啡对硫氧还蛋白的诱导 | 第46页 |
| 2.6 小结 | 第46-49页 |
| 第三章 吗啡对CDK5表达的影响及其信号通路研究 | 第49-57页 |
| 3.1 引言 | 第49-50页 |
| 3.2 实验方案 | 第50-51页 |
| 3.3 实验材料 | 第51页 |
| 3.4 实验方法 | 第51-52页 |
| 3.4.1 细胞培养 | 第51页 |
| 3.4.2 细胞排板与药物刺激 | 第51-52页 |
| 3.5 实验结果 | 第52-54页 |
| 3.5.1 吗啡对PC12细胞内CDK5表达的影响 | 第52-53页 |
| 3.5.2 MK-801阻断了吗啡对CDK5的抑制 | 第53页 |
| 3.5.3 KN-62阻断了吗啡对CDK5的抑制 | 第53-54页 |
| 3.5.4 PD98059阻断了吗啡对CDK5的抑制 | 第54页 |
| 3.6 小结 | 第54-57页 |
| 第四章 吗啡作用下Trx和p-CREB的相关性研究 | 第57-64页 |
| 4.1 引言 | 第57页 |
| 4.2 实验方案 | 第57-58页 |
| 4.3 实验材料 | 第58页 |
| 4.4 实验方法 | 第58-60页 |
| 4.4.1 Trx高表达质粒的转染 | 第58-60页 |
| 4.5 实验结果 | 第60-62页 |
| 4.5.1 不同剂量吗啡作用下对CREB蛋白水平的影响 | 第60页 |
| 4.5.2 不同剂量吗啡作用下对p-CREB蛋白水平的影响 | 第60-61页 |
| 4.5.3 质粒转染后PC12细胞中Trx的表达情况 | 第61页 |
| 4.5.4 Trx高表达PC12细胞中p-CREB的表达情况 | 第61-62页 |
| 4.6 小结 | 第62-64页 |
| 第五章 吗啡作用下Trx和NR2B的相关性研究 | 第64-72页 |
| 5.1 引言 | 第64-65页 |
| 5.2 实验方案 | 第65-66页 |
| 5.3 实验材料 | 第66-67页 |
| 5.3.1 实验动物及耗材 | 第66页 |
| 5.3.2 CPP实验装置 | 第66-67页 |
| 5.4 实验方法 | 第67-68页 |
| 5.4.1 条件性位置偏爱实验 | 第67-68页 |
| 5.4.2 小鼠脑组织的制备 | 第68页 |
| 5.4.3 组织蛋白的提取 | 第68页 |
| 5.5 实验结果 | 第68-70页 |
| 5.5.1 CPP实验结果 | 第68-69页 |
| 5.5.2 吗啡成瘾小鼠海马区NR2B蛋白的表达 | 第69页 |
| 5.5.3 吗啡成瘾小鼠海马区p-CREB蛋白的表达 | 第69-70页 |
| 5.6 小结 | 第70-72页 |
| 第六章 结论 | 第72-74页 |
| 6.1 确定了PC12细胞中吗啡诱导硫氧还蛋白表达的最佳作用剂量 | 第72页 |
| 6.2 证明了PC12细胞中吗啡诱导硫氧还蛋白表达的信号转导通路 | 第72页 |
| 6.3 证明了吗啡作用PC12细胞中CDK5表达的信号转导通路 | 第72页 |
| 6.4 证明了吗啡作用下硫氧还蛋白及p-CREB的相关性 | 第72-73页 |
| 6.5 初步证明了硫氧还蛋白在一定程度上参与了吗啡的成瘾记忆 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-81页 |
| 附录 | 第81-89页 |
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