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青虾咽侧体抑制激素（Allatostatin，AST）基因全长cDNA序列的克隆及表达分析 |
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| 论文目录 |
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| 摘要 | 第1-9页 | | ABSTRACT | 第9-12页 | | 第一章 文献综述 | 第12-34页 | | 第一节 咽侧体抑制激素的研究进展 | 第12-22页 | | 1 神经肽类激素研究进展 | 第12-17页 | | ·昆虫神经肽类激素 | 第13-15页 | | ·咽侧体抑制激素 | 第13-14页 | | ·蜕壳激素 | 第14页 | | ·外激素合成激活神经肽 | 第14页 | | ·FMRF amide相关神经肽 | 第14页 | | ·促甾醇激素 | 第14-15页 | | ·肌肉激活性神经肽 | 第15页 | | ·甲壳动物神经肽类激素 | 第15-17页 | | ·咽侧体抑制激素 | 第15-16页 | | ·甲壳动物心激肽 | 第16页 | | ·速激肽相关肽 | 第16-17页 | | ·FaRPs肽 | 第17页 | | ·促色素细胞素 | 第17页 | | ·肠动肽 | 第17页 | | 2 咽侧体抑制激素(AST)的结构 | 第17-20页 | | ·昆虫AST的结构 | 第17-19页 | | ·甲壳动物AST的结构 | 第19-20页 | | 3 咽侧体抑制激素(AST)的功能 | 第20-21页 | | ·昆虫AST的功能 | 第20页 | | ·甲壳动物AST的功能 | 第20-21页 | | 4 咽侧体抑制激素(AST)的应用 | 第21-22页 | | 第二节 基因克隆、表达研究方法的概述 | 第22-32页 | | 1 基因克隆研究方法的概述 | 第22-24页 | | ·逆转录PCR | 第23页 | | ·套式PCR | 第23页 | | ·快速扩增cDNA末端技术 | 第23-24页 | | 2 基因表达研究方法的概述 | 第24-32页 | | ·复合PCR | 第24-25页 | | ·免疫PCR | 第25页 | | ·原位PCR | 第25页 | | ·定量PCR | 第25-32页 | | ·竞争PCR定量法 | 第25页 | | ·非竞争性对照基因定量法 | 第25-26页 | | ·极限稀释法 | 第26页 | | ·实时荧光定量PCR | 第26-32页 | | ·实时荧光定量PCR的几个重要概念 | 第26-27页 | | ·实时荧光定量PCR的分类 | 第27-30页 | | ·实时荧光定量PCR技术的应用 | 第30-32页 | | 第三节 本研究的目的与意义 | 第32-34页 | | 第二章 青虾咽侧体抑制激素基因的克隆和序列分析 | 第34-64页 | | 1 材料 | 第34页 | | ·实验虾 | 第34页 | | ·试剂 | 第34页 | | ·仪器 | 第34页 | | 2 方法 | 第34-46页 | | ·青虾脑组织总RNA的提取 | 第35-36页 | | ·RNA的浓度测定和质量检测 | 第36页 | | ·cDNA第一链的合成 | 第36-37页 | | ·PCR引物设计 | 第37-38页 | | ·中间片段的扩增 | 第38-39页 | | ·青虾AST基因的3'RACE | 第39-40页 | | ·青虾AST基因的5'RACE | 第40-43页 | | ·Total RNA的处理 | 第40-42页 | | ·5' RACE | 第42-43页 | | ·PCR产物的克隆 | 第43-45页 | | ·感受态的制备 | 第43-44页 | | ·PCR产物的回收 | 第44页 | | ·连接 | 第44页 | | ·转化 | 第44-45页 | | ·重组克隆的筛选 | 第45页 | | ·重组克隆的鉴定 | 第45页 | | ·序列的测定及分析 | 第45-46页 | | 3 结果与分析 | 第46-61页 | | ·青虾脑组织总RNA抽提结果 | 第46页 | | ·青虾AST基因中间片段的分离 | 第46-47页 | | ·青虾AST基因3'端的分离 | 第47-48页 | | ·青虾AST基因5'端的分离 | 第48-49页 | | ·序列分析 | 第49-55页 | | ·青虾AST cDNA的序列结构特征 | 第49-53页 | | ·青虾AST蛋白二级结构与空间结构预测 | 第53-55页 | | ·疏水性分析 | 第53-54页 | | ·跨膜区分析 | 第54页 | | ·信号肽预测 | 第54-55页 | | ·青虾AST氨基酸序列比对 | 第55-58页 | | ·青虾AST蛋白相似度、氨基酸种类分析 | 第58-60页 | | ·系统进化分析 | 第60-61页 | | 4 讨论 | 第61-64页 | | 第三章 青虾咽侧体抑制激素基因在不同组织中的表达分析 | 第64-76页 | | 1 材料 | 第64页 | | 2 方法 | 第64-68页 | | ·实验原理 | 第64页 | | ·总RNA的提取 | 第64-65页 | | ·cDNA第一链的合成 | 第65页 | | ·PCR引物设计 | 第65-66页 | | ·半定量PCR(RT-PCR) | 第66页 | | ·荧光定量PCR反应 | 第66-68页 | | ·目的基因荧光定量PCR反应 | 第66-68页 | | ·内参基因荧光定量PCR反应 | 第68页 | | ·结果判断 | 第68页 | | 3 结果 | 第68-73页 | | ·青虾各组织总RNA的提取 | 第68-69页 | | ·荧光定量PCR引物检测 | 第69-70页 | | ·青虾AST mRNA在不同组织中表达的RT-PCR分析 | 第70页 | | ·青虾AST mRNA在不同组织中表达的qRT-PCR分析 | 第70-73页 | | ·AST mRNA的组织表达差异 | 第70-72页 | | ·β-actin mRNA的组织表达差异 | 第72-73页 | | ·AST mRNA相对定量结果 | 第73页 | | 4 讨论 | 第73-76页 | | 全文结论 | 第76-78页 | | 参考文献 | 第78-86页 | | 附录 实验试剂及配置 | 第86-88页 | | 致谢 | 第88-90页 | | 已发表或已接收的论文 | 第90页 |
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论文编号BS1968769，这篇论文共90页
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