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基于~1H-NMR的四个茶山普洱生茶代谢组学研究 |
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| 中文摘要 | 第6-8页 | | Abstract | 第8-9页 | | 第一章 绪论 | 第10-16页 | | 1.1 普洱茶概况 | 第10-11页 | | 1.1.1 普洱茶的化学成分 | 第10-11页 | | 1.1.2 普洱茶的药理作用 | 第11页 | | 1.2 国内外相关研究成果和现状 | 第11-12页 | | 1.2.1 不同年限普洱茶的差异研究 | 第11页 | | 1.2.2 不同产地普洱茶的差异研究 | 第11-12页 | | 1.2.3 普洱生茶和普洱熟茶的差异研究 | 第12页 | | 1.2.4 其他方面相关研究 | 第12页 | | 1.3 本研究运用的主要理论基础和方法技术 | 第12-15页 | | 1.3.1 超高效液相色谱与串联四级杆飞行时间质谱联用技术 | 第12页 | | 1.3.2 核磁共振技术 | 第12-13页 | | 1.3.3 模式识别分析 | 第13-14页 | | 1.3.4 植物代谢组学研究 | 第14-15页 | | 1.4 本研究的主要内容 | 第15页 | | 1.5 本研究的目的、意义 | 第15-16页 | | 第二章 普洱生茶水溶性成分的UPLC/Q-TOF-MS定性分析 | 第16-39页 | | 2.1 引言 | 第16页 | | 2.2 实验材料试剂与仪器设备 | 第16-17页 | | 2.2.1 实验材料和试剂 | 第16-17页 | | 2.2.2 实验仪器和设备 | 第17页 | | 2.3 实验方法 | 第17-18页 | | 2.3.1 普洱生茶样品溶液的制备 | 第17页 | | 2.3.2 0.1%甲酸的配制 | 第17页 | | 2.3.3 超高效液相色谱条件 | 第17-18页 | | 2.3.4 质谱条件 | 第18页 | | 2.4 结果与讨论 | 第18-38页 | | 2.4.1 液相条件的优化 | 第18-19页 | | 2.4.2 质谱条件的优化 | 第19页 | | 2.4.3 普洱生茶水溶性成分的鉴定 | 第19-38页 | | 2.5 本章小结 | 第38-39页 | | 第三章 普洱生茶水溶性成分的1H-NMR研究方法的建立 | 第39-50页 | | 3.1 引言 | 第39页 | | 3.2 实验材料试剂与仪器设备 | 第39-40页 | | 3.2.1 材料与试剂 | 第39页 | | 3.2.2 仪器与设备 | 第39-40页 | | 3.3 实验方法 | 第40页 | | 3.3.1 样品溶液的制备 | 第40页 | | 3.3.2 ~1H-NMR光谱分析 | 第40页 | | 3.3.3 ~1H-NMR图谱处理及相似度计算 | 第40页 | | 3.4 实验结果与讨论 | 第40-49页 | | 3.4.1 样品溶液制备方法考察 | 第40-42页 | | 3.4.2 脉冲序列的选择 | 第42-43页 | | 3.4.3 ~1H-NMR主要采集参数调试与优化 | 第43-45页 | | 3.4.4 ~1H-NMR谱图信号归属 | 第45-46页 | | 3.4.5 方法验证 | 第46-49页 | | 3.5 本章小结 | 第49-50页 | | 第四章 基于~1H-NMR的四个茶山普洱生茶代谢组学研究 | 第50-65页 | | 4.1 引言 | 第50页 | | 4.2 实验材料试剂与仪器设备 | 第50-51页 | | 4.2.1 材料与试剂 | 第50页 | | 4.2.2 仪器与设备 | 第50-51页 | | 4.3 实验方法 | 第51-52页 | | 4.3.1 样品溶液的制备 | 第51页 | | 4.3.2 ~1H-NMR光谱分析 | 第51页 | | 4.3.3 ~1H-NMR数据预处理及模式识别分析 | 第51-52页 | | 4.3.4 统计分析 | 第52页 | | 4.4 实验结果与讨论 | 第52-63页 | | 4.4.1 ~1H-NMR数据的模式识别分析 | 第52-59页 | | 4.4.2 sPLS-DA模型的验证 | 第59-61页 | | 4.4.3 稀疏载荷向量 | 第61-62页 | | 4.4.4 不同茶山普洱茶的差异代谢物 | 第62-63页 | | 4.5 本章小结 | 第63-65页 | | 第五章 结论、创新点与展望 | 第65-66页 | | 5.1 主要结论 | 第65页 | | 5.2 创新点 | 第65页 | | 5.3 展望 | 第65-66页 | | 参考文献 | 第66-72页 | | 攻读硕士期间发表的论文 | 第72-73页 | | 致谢 | 第73页 |
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论文编号BS2731219，这篇论文共73页
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