| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-30页 |
| 1.1 块菌概述 | 第13页 |
| 1.2 块菌的基础化学组成 | 第13-14页 |
| 1.3 块菌中的有效成分及研究进展 | 第14-17页 |
| 1.3.1 α-雄烷醇（androstenol） | 第14页 |
| 1.3.2 神经酰胺 | 第14-15页 |
| 1.3.3 芳香成分 | 第15页 |
| 1.3.4 多糖成分 | 第15-17页 |
| 1.4 多糖的研究概况 | 第17-27页 |
| 1.4.1 多糖的提取 | 第17-18页 |
| 1.4.2 多糖的纯化 | 第18-20页 |
| 1.4.3 多糖的分级 | 第20-22页 |
| 1.4.4 多糖的纯度鉴定和分子量的测定 | 第22-23页 |
| 1.4.5 多糖的结构分析 | 第23-25页 |
| 1.4.6 多糖的活性 | 第25-27页 |
| 1.5 多糖羧甲基化的研究 | 第27-28页 |
| 1.5.1 羧甲基多糖的制备 | 第27页 |
| 1.5.2 羧甲基多糖的活性研究 | 第27-28页 |
| 1.6 本课题的研究目的及意义 | 第28页 |
| 1.7 本论文研究的主要内容 | 第28-30页 |
| 第二章 块菌多糖的提取工艺优化 | 第30-39页 |
| 2.1 前言 | 第30页 |
| 2.2 实验材料与设备 | 第30-31页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第30页 |
| 2.2.2 实验仪器与设备 | 第30-31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31-33页 |
| 2.3.1 多糖含量的测定方法 | 第31-32页 |
| 2.3.2 块菌粗多糖提取工艺流程 | 第32页 |
| 2.3.3 块菌多糖的传统热水浸提法的工艺研究 | 第32-33页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第33-38页 |
| 2.4.1 多糖含量的测定 | 第33-34页 |
| 2.4.2 块菌多糖热水浸提法的单因素实验结果及分析 | 第34-37页 |
| 2.4.3 正交实验优化工艺 | 第37-38页 |
| 2.5 本章小结 | 第38-39页 |
| 第三章 块菌多糖的分离纯化 | 第39-53页 |
| 3.1 前言 | 第39-40页 |
| 3.2 实验材料与试剂 | 第40-41页 |
| 3.3 实验仪器与设备 | 第41-42页 |
| 3.4 实验方法 | 第42-46页 |
| 3.4.1 块菌多糖的提取 | 第42页 |
| 3.4.2 块菌多糖蛋白质去除和乙醇沉淀 | 第42-43页 |
| 3.4.3 块菌多糖的阴离子交换柱层析纯化 | 第43页 |
| 3.4.4 两种块菌多糖组分对小鼠巨噬细胞RAW264.7 细胞的影响 | 第43-45页 |
| 3.4.5 块菌多糖的凝胶柱层析纯化 | 第45-46页 |
| 3.4.6 多糖含量的测定 | 第46页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第46-51页 |
| 3.5.1 块菌多糖的提取 | 第46页 |
| 3.5.2 块菌多糖离子交换柱层析 | 第46-47页 |
| 3.5.3 两种块菌多糖组分对小鼠巨噬细胞RAW264.7 细胞的影响 | 第47-48页 |
| 3.5.4 TP1和TP2对巨噬细胞的免疫活性影响 | 第48-50页 |
| 3.5.5 块菌多糖TP1的凝胶柱层析纯化 | 第50-51页 |
| 3.5.6 块菌多糖TP1-1 的纯度鉴定 | 第51页 |
| 3.6 本章小结 | 第51-53页 |
| 第四章 块菌多糖的结构鉴定 | 第53-68页 |
| 4.1 引言 | 第53-54页 |
| 4.2 实验材料与试剂 | 第54页 |
| 4.3 实验仪器与设备 | 第54-55页 |
| 4.4 实验方法 | 第55-58页 |
| 4.4.1 块菌多糖分子量的分布测定 | 第55-56页 |
| 4.4.2 块菌多糖的单糖组成分析 | 第56页 |
| 4.4.3 块菌多糖TP1-1 的紫外光谱扫描 | 第56页 |
| 4.4.4 块菌多糖TP1-1 的红外光谱扫描 | 第56-57页 |
| 4.4.5 高碘酸氧化 | 第57页 |
| 4.4.6 块菌多糖TP1-1 的核磁共振分析 | 第57页 |
| 4.4.7 刚果红实验 | 第57页 |
| 4.4.8 碘-碘化钾反应 | 第57-58页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第58-67页 |
| 4.5.1 块菌多糖TP1-1 的相对分子质量测定 | 第58页 |
| 4.5.2 块菌多糖TP1-1 的单糖组成分析 | 第58-60页 |
| 4.5.3 块菌多糖TP1-1 的紫外扫描 | 第60-61页 |
| 4.5.4 块菌多糖TP1-1 的红外光谱分析 | 第61-62页 |
| 4.5.5 高碘酸氧化分析 | 第62-64页 |
| 4.5.6 核磁共振分析 | 第64-65页 |
| 4.5.7 刚果红实验 | 第65-66页 |
| 4.5.8 碘-碘化钾反应 | 第66-67页 |
| 4.6 本章小结 | 第67-68页 |
| 第五章 块菌多糖的羧甲基改性及活性研究 | 第68-80页 |
| 5.1 前言 | 第68页 |
| 5.2 实验材料与试剂 | 第68-69页 |
| 5.3 实验仪器与设备 | 第69-70页 |
| 5.4 实验方法 | 第70-73页 |
| 5.4.1 羧甲基化块菌多糖TP1-1（CMTP1-1）的制备 | 第70页 |
| 5.4.2 羧甲基化取代度的测定 | 第70-71页 |
| 5.4.3 TP1-1 和CMTP1-1 对小鼠巨噬细胞RAW264.7 细胞的影响 | 第71-72页 |
| 5.4.4 TP1-1 和CMTP1-1 的抗氧化活性 | 第72-73页 |
| 5.5 结果与讨论 | 第73-79页 |
| 5.5.1 块菌多糖TP1-1 的羧甲基化 | 第73-74页 |
| 5.5.2 TP1-1 和CMTP1-1 对巨噬细胞的毒性作用 | 第74-75页 |
| 5.5.3 TP1-1 和CMTP1-1 对RAW264.7 细胞吞噬中性红能力的影响 | 第75-76页 |
| 5.5.4 TP1-1 和CMTP1-1 的抗氧化活性 | 第76-79页 |
| 5.6 本章小结 | 第79-80页 |
| 结论与展望 | 第80-82页 |
| 一、结论 | 第80-81页 |
| 二、本课题的主要创新点 | 第81页 |
| 三、展望 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-90页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第90-93页 |
| 致谢 | 第93-94页 |
| 答辩委员会对论文的评定意见 | 第94页 |
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