| 中文摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略词 | 第9-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-18页 |
| 1.1 癫痫 | 第14页 |
| 1.2 癫痫耐药机制中多药耐药转运体的研究 | 第14-15页 |
| 1.3 中西药复合并用治疗癫痫的研究概况 | 第15-16页 |
| 1.3.1 癫痫的病因病机 | 第15页 |
| 1.3.2 中西药结合治疗癫痫的临床及实验研究 | 第15-16页 |
| 1.3.3 复方丹参滴丸治疗癫痫的研究进展 | 第16页 |
| 1.4 难治性癫痫模型的建立 | 第16-17页 |
| 1.5 研究内容 | 第17-18页 |
| 第二章 复方丹参滴丸对卡马西平在正常及难治性癫痫大鼠脑内分布的影响 | 第18-27页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.1.1 药物及试剂 | 第18页 |
| 2.1.2 动物 | 第18-19页 |
| 2.1.3 仪器 | 第19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-23页 |
| 2.2.1 癫痫模型建立 | 第19页 |
| 2.2.2 分组及给药 | 第19页 |
| 2.2.3 色谱与质谱条件 | 第19-20页 |
| 2.2.4 溶液的配制 | 第20页 |
| 2.2.5 样品处理 | 第20页 |
| 2.2.6 方法学验证 | 第20-22页 |
| 2.2.7 统计分析 | 第22-23页 |
| 2.3 结果 | 第23-25页 |
| 2.3.1 行为学观察 | 第23页 |
| 2.3.2 正常和难治性癫痫大鼠中卡马西平的脑组织分布差异 | 第23页 |
| 2.3.3 复方丹参滴丸对卡马西平在正常大鼠脑组织中的分布影响 | 第23-24页 |
| 2.3.4 复方丹参滴丸对卡马西平在难治性癫痫大鼠脑组织中的分布影响 | 第24-25页 |
| 2.4 讨论 | 第25-27页 |
| 第三章 复方丹参滴丸对卡马西平在正常及难治性癫痫大鼠体内的药动学影响 | 第27-35页 |
| 3.1 实验材料 | 第27-28页 |
| 3.1.1 药物及试剂 | 第27页 |
| 3.1.2 动物 | 第27-28页 |
| 3.1.3 仪器 | 第28页 |
| 3.2 实验方法 | 第28-31页 |
| 3.2.1 癫痫模型建立 | 第28页 |
| 3.2.2 分组及给药 | 第28页 |
| 3.2.3 色谱条件及质谱条件 | 第28-29页 |
| 3.2.4 溶液的配制 | 第29页 |
| 3.2.5 样品处理 | 第29页 |
| 3.2.6 方法学验证 | 第29-31页 |
| 3.3 结果 | 第31-34页 |
| 3.3.1 复方丹参滴丸对卡马西平在正常大鼠血浆中的药动学影响 | 第31-32页 |
| 3.3.2 复方丹参滴丸对卡马西平在难治性癫痫大鼠血浆中的药动学影响 | 第32-34页 |
| 3.4 讨论 | 第34-35页 |
| 第四章 RT-PCR检测复方丹参滴丸联合卡马西平对癫痫大鼠海马体MDR1及Mrp1 mRNA表达水平的影响 | 第35-43页 |
| 4.1 实验材料 | 第35-36页 |
| 4.1.1 药物及试剂 | 第35页 |
| 4.1.2 动物 | 第35页 |
| 4.1.3 仪器 | 第35-36页 |
| 4.2 实验方法 | 第36-39页 |
| 4.2.1 癫痫模型建立 | 第36页 |
| 4.2.2 分组及给药 | 第36页 |
| 4.2.3 组织样本收集 | 第36页 |
| 4.2.4 引物设计 | 第36-37页 |
| 4.2.5 组织总RNA提取及定量 | 第37页 |
| 4.2.6 反转录合成cDNA | 第37-38页 |
| 4.2.7 Real-TimePCR反应 | 第38-39页 |
| 4.2.8 数据处理及统计学分析 | 第39页 |
| 4.3 实验结果 | 第39-41页 |
| 4.3.1 45 d时各组大鼠海马组织中Mrp1及MDR1基因mRNA表达的变化 | 第39-40页 |
| 4.3.2 90 d时各组大鼠海马组织中Mrp1及MDR1基因mRNA表达的变化 | 第40-41页 |
| 4.4 讨论 | 第41-43页 |
| 第五章 Western blot检测复方丹参滴丸联合卡马西平对癫痫大鼠海马体P-gp及Mrp1蛋白表达水平的影响 | 第43-50页 |
| 5.1 实验材料 | 第43-44页 |
| 5.1.1 药物及试剂 | 第43页 |
| 5.1.2 动物 | 第43-44页 |
| 5.1.3 仪器 | 第44页 |
| 5.2 实验方法 | 第44-45页 |
| 5.2.1 癫痫模型建立 | 第44页 |
| 5.2.2 分组及给药 | 第44页 |
| 5.2.3 组织样本收集 | 第44-45页 |
| 5.2.4 蛋白样品提取 | 第45页 |
| 5.2.5 蛋白样品定量 | 第45页 |
| 5.2.6 蛋白样品变性 | 第45页 |
| 5.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第45-46页 |
| 5.3.1 灌胶与上样 | 第45页 |
| 5.3.2 电泳 | 第45-46页 |
| 5.3.3 转膜 | 第46页 |
| 5.3.4 封闭 | 第46页 |
| 5.3.5 抗体孵育 | 第46页 |
| 5.3.6 ECL发光显影 | 第46页 |
| 5.3.7 实验结果图像分析及统计学分析 | 第46页 |
| 5.4 实验结果 | 第46-48页 |
| 5.4.1 45 d时各组大鼠海马组织中Mrp1及P-gp蛋白表达的变化 | 第46-47页 |
| 5.4.2 90 d时各组大鼠海马组织中Mrp1及P-gp蛋白表达的变化 | 第47-48页 |
| 5.5 讨论 | 第48-50页 |
| 研究结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |
| 在学期间的研究成果 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
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