| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 缩略语表 | 第7-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-18页 |
| 1.1 食物过敏研究现状 | 第12-13页 |
| 1.1.1 过敏反应 | 第12页 |
| 1.1.2 食物过敏及其免疫学机制 | 第12-13页 |
| 1.1.3 鸡蛋卵白蛋白诱导的食物过敏 | 第13页 |
| 1.2 食物过敏与肠道菌群的关系 | 第13-14页 |
| 1.2.1 肠道菌群 | 第13-14页 |
| 1.2.2 肠道菌群与食物过敏 | 第14页 |
| 1.3 防治食物过敏性疾病研究进展 | 第14-15页 |
| 1.3.1 抗原特异性免疫治疗 | 第14页 |
| 1.3.2 益生菌预防与治疗食物过敏 | 第14-15页 |
| 1.4 抗氧化与食物过敏机制研究 | 第15-16页 |
| 1.4.1 氧化应激 | 第15页 |
| 1.4.2 抗氧化作用抑制过敏反应研究 | 第15-16页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第16-17页 |
| 1.6 研究内容 | 第17-18页 |
| 第2章 婴儿双歧杆菌SOD抑制OVA过敏模型及评价 | 第18-40页 |
| 2.1 引言 | 第18页 |
| 2.2 实验材料 | 第18-22页 |
| 2.2.1 动物 | 第18-19页 |
| 2.2.2 菌株 | 第19页 |
| 2.2.3 主要仪器试剂及溶液配制 | 第19-22页 |
| 2.3 实验方法 | 第22-27页 |
| 2.3.1 婴儿双歧杆菌(BB)SOD干预OVA过敏小鼠模型流程图 | 第22页 |
| 2.3.2 BB悬液的制备 | 第22页 |
| 2.3.3 OVA过敏模型的建立 | 第22页 |
| 2.3.4 BB干预OVA过敏模型的建立 | 第22-23页 |
| 2.3.5 BB或DDC干预OVA过敏模型的建立 | 第23页 |
| 2.3.6 脱敏治疗模型的建立 | 第23页 |
| 2.3.7 临床指标观察打分 | 第23-24页 |
| 2.3.8 血清OVA-IgE的测定 | 第24页 |
| 2.3.9 血清OVA-IgG1和OVA-IgG2a的测定 | 第24页 |
| 2.3.10 脾淋巴细胞因子的测定 | 第24-25页 |
| 2.3.11 肠组织MDA及SOD的测定 | 第25页 |
| 2.3.12 肠组织病理切片染色观察 | 第25-26页 |
| 2.3.13 流式细胞术检测Th1/Th2细胞 | 第26-27页 |
| 2.4 统计学处理 | 第27页 |
| 2.5 结果 | 第27-37页 |
| 2.5.1 小鼠体重变化 | 第27-28页 |
| 2.5.2 BB缓解OVA过敏反应症状 | 第28页 |
| 2.5.3 BB降低小鼠血清中OVA-IgE和OVA-IgG1的水平 | 第28-29页 |
| 2.5.4 BB提高小鼠血清中OVA-IgG2a水平 | 第29-30页 |
| 2.5.5 BB促进Th0向Th1型细胞因子转化 | 第30-31页 |
| 2.5.6 BB增强肠组织SOD活性从而抑制MDA的生成 | 第31-33页 |
| 2.5.7 BB缓解小鼠肠组织病理炎症 | 第33-35页 |
| 2.5.8 BB促进过敏小鼠体内的Th0向Th1转化 | 第35-37页 |
| 2.6 讨论 | 第37-39页 |
| 2.7 本章小结 | 第39-40页 |
| 第3章 DDC对婴儿双歧杆菌SOD活性的影响 | 第40-48页 |
| 3.1 引言 | 第40页 |
| 3.2 实验材料 | 第40-41页 |
| 3.2.1 动物 | 第40页 |
| 3.2.2 菌株 | 第40页 |
| 3.2.3 主要仪器试剂及溶液配制 | 第40-41页 |
| 3.3 实验方法 | 第41-42页 |
| 3.3.1 BB增菌培养 | 第41页 |
| 3.3.2 BB菌液OD600的测定及最适生长曲线的绘制 | 第41页 |
| 3.3.3 DDC对预先培养的BB体内SOD影响 | 第41页 |
| 3.3.4 DDC对正常小鼠体内SOD影响 | 第41-42页 |
| 3.3.5 DDC作用BB和正常小鼠SOD活性的测定 | 第42页 |
| 3.4 统计分析 | 第42页 |
| 3.5 结果 | 第42-45页 |
| 3.5.1 BB最适培养条件的优化 | 第42-43页 |
| 3.5.2 BB最适生长曲线绘制 | 第43页 |
| 3.5.3 DDC对BB和小鼠SOD活性影响 | 第43-45页 |
| 3.6 讨论 | 第45-46页 |
| 3.7 本章小结 | 第46-48页 |
| 第4章 婴儿双歧杆菌影响BMDC过敏反应的机理 | 第48-64页 |
| 4.1 引言 | 第48-49页 |
| 4.2 实验材料 | 第49-50页 |
| 4.2.1 动物 | 第49页 |
| 4.2.2 实验菌株 | 第49页 |
| 4.2.3 主要仪器试剂及溶液配制 | 第49-50页 |
| 4.3 实验方法 | 第50-56页 |
| 4.3.1 骨髓来源树突细胞(BMDC)的获得及培养 | 第50-51页 |
| 4.3.2 CT、OVA刺激BMDC生成MDA和TIM4含量的测定 | 第51-53页 |
| 4.3.3 BB影响CT和OVA作用BMDC生成MDA和TIM4的含量测定 | 第53页 |
| 4.3.4 BB影响CT和OVA作用BMDC生成cAMP的含量测定 | 第53页 |
| 4.3.5 qRT-PCR检测BMDC分子mRNA的表达情况 | 第53-56页 |
| 4.4 统计学分析 | 第56页 |
| 4.5 结果 | 第56-62页 |
| 4.5.1 诱导BMDC分化成熟图 | 第56-57页 |
| 4.5.2 CT、OVA影响BMDC内MDA和TIM4的表达 | 第57-59页 |
| 4.5.3 BB抑制经CT和OVA作用BMDC后MDA和TIM4的表达 | 第59-60页 |
| 4.5.4 BB抑制经CT和OVA作用BMDC后cAMP的表达 | 第60页 |
| 4.5.5 BB影响经CT和OVA作用BMDC后分子mRNA的表达 | 第60-62页 |
| 4.6 讨论 | 第62-63页 |
| 4.7 本章小结 | 第63-64页 |
| 第5章 结论与展望 | 第64-66页 |
| 5.1 结论 | 第64-65页 |
| 5.2 展望 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-74页 |
| 攻读学位期间论文成果 | 第74页 |
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