| 缩写词表 | 第3-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 引言 | 第13-15页 |
| 第二章 国内外研究进展 | 第15-45页 |
| 2.1 Na~+有益作用的研究进展 | 第15-19页 |
| 2.1.1 Na~+有益作用研究概况 | 第15-17页 |
| 2.1.2 Na~+参与C_4植物叶绿体中丙酮酸的转运 | 第17页 |
| 2.1.3 Na~+可能代替K~+的功能 | 第17-19页 |
| 2.2 植物K~+的吸收、再分配和稳态平衡研究进展 | 第19-34页 |
| 2.2.1 植物K~+转运蛋白在K~+的吸收、再分配和稳态平衡中的功能 | 第20-25页 |
| 2.2.2 植物中K~+通道的调控机制及功能研究进展 | 第25-34页 |
| 2.3 植物体内Na~+的转运 | 第34-45页 |
| 2.3.1 根部Na~+的吸收 | 第34-39页 |
| 2.3.2 根部Na~+的外排 | 第39-40页 |
| 2.3.3 根中Na~+的径向转运 | 第40页 |
| 2.3.4 木质部Na~+的装载及卸载 | 第40-42页 |
| 2.3.5 液泡Na~+的区域化 | 第42-44页 |
| 2.3.6 Na~+再循环 | 第44-45页 |
| 第三章 干旱胁迫下NaCl改善霸王光合作用和水分状况的研究 | 第45-58页 |
| 3.1 材料与方法 | 第46-48页 |
| 3.1.1 沙培实验材料培养及处理方法 | 第46页 |
| 3.1.2 盆栽实验材料培养及处理方法 | 第46页 |
| 3.1.3 各种指标的测量方法 | 第46-48页 |
| 3.1.4 数据处理 | 第48页 |
| 3.2 结果与分析 | 第48-54页 |
| 3.2.1 NaCl对正常条件下霸王光合作用和水分状况的影响 | 第48-51页 |
| 3.2.2 50 mM NaCl对干旱胁迫下霸王光合作用及水分状况的影响 | 第51-53页 |
| 3.2.3 干旱胁迫下霸王叶中Na~+、K~+积累及其对叶渗透势的贡献 | 第53-54页 |
| 3.3 讨论 | 第54-57页 |
| 3.3.1 NaCl通过增强霸王的渗透调节能力以改善光合作用及水分状况 | 第54-55页 |
| 3.3.2 不同环境条件下Na~+、K~+对霸王叶渗透势的贡献 | 第55-56页 |
| 3.3.3 适量NaCl能显著提高霸王的叶绿素含量 | 第56页 |
| 3.3.4 适量NaCl可减轻干旱胁迫对霸王光系统Ⅱ活性的抑制 | 第56-57页 |
| 3.4 小结 | 第57-58页 |
| 第四章 霸王响应盐和渗透胁迫的转录组学研究 | 第58-124页 |
| 4.1 材料与方法 | 第59-62页 |
| 4.1.1 实验材料培养及处理方法 | 第59页 |
| 4.1.2 转录组(transcriptome)测序 | 第59-60页 |
| 4.1.3 数字基因表达谱(Digital Gene Expression DGE)测序 | 第60-61页 |
| 4.1.4 数字基因表达谱结果的Real-time PCR验证 | 第61-62页 |
| 4.2 结果与分析 | 第62-118页 |
| 4.2.1 转录组测序结果分析 | 第62-66页 |
| 4.2.2 50 mM NaCl和-0.5MPa渗透胁迫下霸王根和叶中基因表达谱分析 | 第66-107页 |
| 4.2.3 50 mM NaCl和-0.5MPa渗透胁迫处理下霸王根和叶中活性氧清除DEGs的比较 | 第107-108页 |
| 4.2.4 光合作用相关基因 | 第108-116页 |
| 4.2.5 差异基因表达白勺Real-time PCR验证结果 | 第116-118页 |
| 4.3 讨论 | 第118-122页 |
| 4.3.1 离子转运在霸王响应盐和干旱胁迫过程中发挥重要功能 | 第118-120页 |
| 4.3.2 活性氧清除系统在霸王响应盐和干旱过程中发挥重要作用 | 第120-122页 |
| 4.3.3 NaCl促进霸王光合作用的分子机制 | 第122页 |
| 4.4 小结 | 第122-124页 |
| 第五章 ZxSOS1在霸王体内Na~+长距离运输中的作用研究 | 第124-151页 |
| 5.1 材料与方法 | 第125-132页 |
| 5.1.1 材料 | 第125页 |
| 5.1.2 方法 | 第125-132页 |
| 5.2 结果与分析 | 第132-147页 |
| 5.2.1 霸王ZxSOS1的全长cDNA的克隆 | 第132-136页 |
| 5.2.2 霸王ZxSOS1的表达模式分析 | 第136-140页 |
| 5.2.3 利用RNA干扰技术对霸王ZxSOS1的功能的分析 | 第140-147页 |
| 5.3 讨论 | 第147-150页 |
| 5.3.1 ZxSOS1在霸王响应盐及干旱环境中起着重要作用 | 第147-148页 |
| 5.3.2 ZxSOS1参与调控霸王的生长及体内Na~+、K~+的运输和分配 | 第148-150页 |
| 5.4 小结 | 第150-151页 |
| 第六章 霸王ZxAKT1在植物K~+吸收中的功能研究 | 第151-165页 |
| 6.1 材料与方法 | 第151-158页 |
| 6.1.1 载体、酵母菌株、植物材料和培养基 | 第151-154页 |
| 6.1.2 酵母表达载体的构建、转化及分析 | 第154-156页 |
| 6.1.3 植物表达载体的构建、质粒对拟南芥的转化及表型分析 | 第156-158页 |
| 6.2 结果与分析 | 第158-163页 |
| 6.2.1 ZxAKT1在酵母中介导K~+的吸收 | 第158页 |
| 6.2.2 ZxAKT1在酵母中不参与Na~+的吸收 | 第158-159页 |
| 6.2.3 ZxAKT1的超表达对低K~+条件下akt1-1突变体生长的影响 | 第159-160页 |
| 6.2.4 ZxAKT1的超表达对NaCl胁迫下akt1-1突变体生长的影响 | 第160-162页 |
| 6.2.5 ZxAKT1的超表达对NaCl处理下野生型拟南芥生长的影响 | 第162-163页 |
| 6.3 讨论 | 第163-164页 |
| 6.4 小结 | 第164-165页 |
| 第七章 霸王适应盐和渗透胁迫中NO_3~-吸收转运的分子机制初探 | 第165-172页 |
| 7.1 材料与方法 | 第165-166页 |
| 7.2 结果与分析 | 第166-169页 |
| 7.3 讨论 | 第169-171页 |
| 7.4 小结 | 第171-172页 |
| 第八章 CBL7在植物响应低NO_3~-过程中的作用研究 | 第172-193页 |
| 8.1 材料与方法 | 第173-178页 |
| 8.1.1 材料 | 第173-174页 |
| 8.1.2 方法 | 第174-178页 |
| 8.2 结果与分析 | 第178-189页 |
| 8.2.1 CBL7的表达模式分析 | 第178-180页 |
| 8.2.2 cbl7突变体在低NO_3~-条件下表现出长势较差的表型 | 第180-183页 |
| 8.2.3 cbl7突变体在低NO_3~-处理下的表型依赖于pH | 第183-185页 |
| 8.2.4 缺NO_3~-条件下cbl7高亲和性NO_3~-转运蛋白基因表达显著受抑 | 第185-186页 |
| 8.2.5 cbl7表型能被CBL7的超表达互补 | 第186-188页 |
| 8.2.6 缺NO_3~-条件下cbl7高亲和性NO_3~-吸收能力显著降低 | 第188-189页 |
| 8.2.7 CBL7与CIPKs的相互作用分析 | 第189页 |
| 8.3 讨论 | 第189-192页 |
| 8.4 小结 | 第192-193页 |
| 第九章 结论 | 第193-195页 |
| 参考文献 | 第195-229页 |
| 在学期间(2009-2014年)的研究成果 | 第229-232页 |
| 致谢 | 第232页 |
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