|
|
|
酶解改性技术在鲢鱼肌原纤维蛋白改性中的应用研究 |
|
论文目录 |
|
摘要 | 第3-5页 | abstract | 第5-6页 | 第一章 绪论 | 第10-25页 | 1.1 我国淡水鱼资源现状 | 第10页 | 1.2 我国淡水鱼加工现状 | 第10-11页 | 1.3 鲢鱼概况 | 第11-13页 | 1.3.1 鲢鱼的营养价值 | 第11-12页 | 1.3.2 鲢鱼蛋白的功能性质 | 第12-13页 | 1.4 蛋白质改性的常用方法 | 第13-16页 | 1.4.1 酸法水解 | 第13页 | 1.4.2 糖基化改性 | 第13-14页 | 1.4.3 磷酸化改性 | 第14-15页 | 1.4.4 酰胺化改性 | 第15页 | 1.4.5 酶法改性 | 第15-16页 | 1.5 蛋白酶解改性的研究现状 | 第16-17页 | 1.6 蛋白水解产物的应用现状及前景 | 第17-19页 | 1.6.1 蛋白水解产物在医药、化妆品和保健品方面的应用 | 第17-18页 | 1.6.2 蛋白质水解产物在低过敏性食品中的应用 | 第18页 | 1.6.3 在食品调味中的应用 | 第18-19页 | 1.6.4 在蛋白粉中的应用 | 第19页 | 1.7 膜分离技术在食品中的应用 | 第19-22页 | 1.7.1 膜技术的简介及其发展 | 第19-20页 | 1.7.2 膜分离在食品中的应用 | 第20-22页 | 1.7.3 膜的清洗 | 第22页 | 1.8 立题依据、意义及研究内容 | 第22-25页 | 1.8.1 立题依据 | 第22-23页 | 1.8.2 主要研究内容 | 第23-24页 | 1.8.3 创新点或特色 | 第24-25页 | 第二章 酶解改性对鲢鱼肌原纤维蛋白乳化性与起泡性的影响研究 | 第25-46页 | 2.1 材料与方法 | 第25-30页 | 2.1.1 实验材料 | 第25页 | 2.1.2 实验试剂 | 第25-26页 | 2.1.3 实验仪器 | 第26页 | 2.1.4 肌原纤维蛋白的提取 | 第26-27页 | 2.1.5 肌原纤维蛋白酶解液的制备工艺 | 第27页 | 2.1.6 水解度的测定 | 第27-28页 | 2.1.7 肌原纤维形态学分析 | 第28页 | 2.1.8 SDS-PAGE | 第28-29页 | 2.1.9 溶解性的测定 | 第29页 | 2.1.10 乳化性的测定 | 第29-30页 | 2.1.11 起泡性的测定 | 第30页 | 2.2 结果与讨论 | 第30-45页 | 2.2.1 单酶酶解对鲢鱼肌原纤维蛋白的影响 | 第30-38页 | 2.2.2 复合酶酶解改性对肌原纤维蛋白的影响 | 第38-45页 | 2.3 本章小结 | 第45-46页 | 第三章 酶解改性在鲢鱼肌原纤维蛋白溶解性改善中的应用研究 | 第46-64页 | 3.1 材料与方法 | 第46-50页 | 3.1.1 实验材料 | 第46-47页 | 3.1.2 实验试剂 | 第47页 | 3.1.3 实验仪器 | 第47页 | 3.1.4 肌原纤维蛋白的酶解工艺 | 第47页 | 3.1.5 水解度的测定 | 第47页 | 3.1.6 氮存在形式的测定 | 第47-48页 | 3.1.7 蛋白质粒径分布 | 第48页 | 3.1.8 分子量分布的测定 | 第48-49页 | 3.1.9 蛋白质热稳定性的测定 | 第49页 | 3.1.10 蛋白质表面疏水性的测定 | 第49页 | 3.1.11 内源性荧光的测定 | 第49-50页 | 3.1.12 氨基酸分析 | 第50页 | 3.1.13 SDS-PAGE | 第50页 | 3.2 结果与讨论 | 第50-62页 | 3.2.1 酶解过程中水解度的变化 | 第50-51页 | 3.2.2 水解程度的优化 | 第51-57页 | 3.2.3 酶解改性蛋白的溶解性 | 第57-58页 | 3.2.4 酶解改性蛋白的热稳定性 | 第58-59页 | 3.2.5 酶解液中不溶性沉淀形成机理 | 第59-62页 | 3.3 本章小结 | 第62-64页 | 第四章 膜分离技术在酶解液组分分离中的研究 | 第64-79页 | 4.1 材料与设备 | 第64-66页 | 4.1.1 实验材料 | 第64页 | 4.1.2 实验试剂 | 第64页 | 4.1.3 实验仪器 | 第64-65页 | 4.1.4 实验方法 | 第65页 | 4.1.5 膜通量的测定 | 第65页 | 4.1.6 溶解性的测定 | 第65页 | 4.1.7 乳化活性及稳定性的测定 | 第65页 | 4.1.8 起泡性及起泡稳定性的测定 | 第65-66页 | 4.1.9 蛋白质含量的测定 | 第66页 | 4.1.10 蛋白质分子量的测定 | 第66页 | 4.1.11 表面疏水性的测定 | 第66页 | 4.1.12 粒径分布 | 第66页 | 4.2 结果与讨论 | 第66-77页 | 4.2.1 分离条件对膜分离的影响 | 第66-69页 | 4.2.2 酶解和膜分离技术对功能性质的影响 | 第69-72页 | 4.2.3 膜分离组分分子量分布 | 第72-74页 | 4.2.4 膜分离组分蛋白粒径分布 | 第74-75页 | 4.2.5 膜分离组分表面疏水性 | 第75-76页 | 4.2.6 膜的清洗 | 第76-77页 | 4.3 本章小结 | 第77-79页 | 第五章 总结与展望 | 第79-81页 | 5.1 总结 | 第79页 | 5.2 展望 | 第79-81页 | 参考文献 | 第81-90页 | 致谢 | 第90-91页 | 攻读学位期间发表的学术论文 | 第91页 |
|
|
|
|
论文编号BS4446621,这篇论文共91页 会员购买按0.35元/页下载,共需支付31.85元。 直接购买按0.5元/页下载,共需要支付45.5元 。 |
|
|
我还不是会员,注册会员!
会员下载更优惠!充值送钱! |
我只需要这篇,无需注册!
直接网上支付,方便快捷! |
|
|
|
版权申明:本目录由www.jylw.com网站制作,本站并未收录原文,如果您是作者,需要删除本篇论文目录请通过QQ或其它联系方式告知我们,我们承诺24小时内删除。 |
|
|