| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第15-46页 |
| 1.1 尿酸、高尿酸血症和痛风 | 第15-16页 |
| 1.2 植物提取物的降尿酸活性研究 | 第16-18页 |
| 1.3 黄嘌呤氧化酶与酶抑制作用类型 | 第18-20页 |
| 1.3.1 黄嘌呤氧化酶 | 第18页 |
| 1.3.2 酶抑制作用的类型 | 第18-20页 |
| 1.4 黄嘌呤氧化酶抑制剂 | 第20-32页 |
| 1.4.1 含氮杂环类抑制剂 | 第20-24页 |
| 1.4.2 含氧杂环类抑制剂 | 第24-30页 |
| 1.4.3 其它类型的抑制剂 | 第30-32页 |
| 1.5 氧化应激和黄嘌呤氧化酶 | 第32-33页 |
| 1.6 核桃的研究与开发利用现状 | 第33-37页 |
| 1.6.1 核桃壳的物质基础与生物活性研究 | 第33-34页 |
| 1.6.2 核桃青皮的物质基础与生物活性研究 | 第34-35页 |
| 1.6.3 核桃内种皮的物质基础与生物活性研究 | 第35页 |
| 1.6.4 核桃仁及核桃饼粕的物质基础与生物活性研究 | 第35-36页 |
| 1.6.5 核桃叶的物质基础与生物活性研究 | 第36-37页 |
| 1.7 本课题研究的立题依据和主要研究内容 | 第37-38页 |
| 1.7.1 立题依据 | 第37页 |
| 1.7.2 主要研究内容 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-46页 |
| 第二章 分光光度法和高效液相色谱法测定酚类物质黄嘌呤氧化酶抑制活性的对比研究 | 第46-65页 |
| 2.1 前言 | 第46-47页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第47-48页 |
| 2.2.1 试剂 | 第47页 |
| 2.2.2 主要仪器设备 | 第47-48页 |
| 2.3 实验方法 | 第48-51页 |
| 2.3.1 溶液的配制 | 第48页 |
| 2.3.2 初始的黄嘌呤氧化酶催化反应条件 | 第48-49页 |
| 2.3.3 黄嘌呤氧化酶抑制活性测定的分光光度法 | 第49页 |
| 2.3.4 黄嘌呤氧化酶抑制活性测定的高效液相色谱法 | 第49页 |
| 2.3.5 黄嘌呤氧化酶抑催化反应条件的优化 | 第49-50页 |
| 2.3.6 方法学验证 | 第50页 |
| 2.3.7 潜在的干扰物对分光光度法测定抑制活性的影响 | 第50-51页 |
| 2.3.8 数据分析 | 第51页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第51-60页 |
| 2.4.1 黄嘌呤氧化酶催化反应条件的优化 | 第51-54页 |
| 2.4.2 两种方法测定尿酸时的线性相关性比较 | 第54页 |
| 2.4.3 两种方法日内精密度的对比研究 | 第54-55页 |
| 2.4.4 催化反应体系中的物质对分光光度法测定黄嘌呤氧化酶抑制活性的影响 | 第55-57页 |
| 2.4.5 黄嘌呤氧化酶抑制活性测定的高效液相色谱法 | 第57-58页 |
| 2.4.6 高效液相色谱法稳定性和日间精密度的研究 | 第58-60页 |
| 2.5 本章小结 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-65页 |
| 第三章 核桃果实、茎和叶提取物抗氧化和黄嘌呤氧化酶抑制活性的研究 | 第65-77页 |
| 3.1 前言 | 第65页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第65-67页 |
| 3.2.1 试剂 | 第65-66页 |
| 3.2.2 主要仪器设备 | 第66页 |
| 3.2.3 原料 | 第66-67页 |
| 3.3 实验方法 | 第67-70页 |
| 3.3.1 样品醇提物的制备 | 第67页 |
| 3.3.2 总酚含量的测定 | 第67-68页 |
| 3.3.3 氧自由基吸收能力（ORAC）的测定 | 第68页 |
| 3.3.4 还原力的测定 | 第68页 |
| 3.3.5 黄嘌呤氧化酶抑制活性的测定 | 第68-69页 |
| 3.3.6 各样品的高效液相色谱分析 | 第69页 |
| 3.3.7 数据分析 | 第69-70页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第70-73页 |
| 3.4.1 样品的提取率和多酚含量 | 第70页 |
| 3.4.2 样品的抗氧化活性 | 第70-72页 |
| 3.4.3 样品的黄嘌呤氧化酶抑制活性 | 第72页 |
| 3.4.4 样品的高效液相色谱分析 | 第72-73页 |
| 3.5 本章小结 | 第73页 |
| 参考文献 | 第73-77页 |
| 第四章 核桃壳提取物的体内降尿酸活性及活性物质的分离、纯化和鉴定 | 第77-96页 |
| 4.1 前言 | 第77-78页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第78-80页 |
| 4.2.1 试剂 | 第78-79页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第79页 |
| 4.2.3 实验用大鼠 | 第79-80页 |
| 4.3 实验方法 | 第80-82页 |
| 4.3.1 核桃壳提取物的制备 | 第80页 |
| 4.3.2 核桃壳提取物体内降尿酸活性的研究 | 第80页 |
| 4.3.3 总酚含量的测定 | 第80-81页 |
| 4.3.4 氧自由基吸收能力（ORAC）的测定 | 第81页 |
| 4.3.5 还原力的测定 | 第81页 |
| 4.3.6 DPPH·清除能力的测定 | 第81页 |
| 4.3.7 黄嘌呤氧化酶抑制活性的测定 | 第81页 |
| 4.3.8 以活性为导向，分离和纯化核桃壳提取物中的活性物质 | 第81-82页 |
| 4.3.9 活性物质的鉴定 | 第82页 |
| 4.3.10 样品的黄嘌呤氧化酶抑制类型和抑制常数研究 | 第82页 |
| 4.3.11 数据分析 | 第82页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第82-92页 |
| 4.4.1 核桃壳提取物体内降尿酸活性研究 | 第82-85页 |
| 4.4.2 以活性为导向，分离、纯化和鉴定核桃壳提取物内活性物质 | 第85-90页 |
| 4.4.3 对香豆醛的黄嘌呤氧化酶抑制类型和抑制常数研究 | 第90-91页 |
| 4.4.4 对香豆醛与别嘌呤醇的协同增效作用研究 | 第91-92页 |
| 4.5 本章小结 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-96页 |
| 第五章 对香豆醛及其类似物的黄嘌呤氧化酶抑制活性构效关系的探讨 | 第96-118页 |
| 5.1 前言 | 第96页 |
| 5.2 实验材料与仪器 | 第96-98页 |
| 5.2.1 试剂 | 第96-97页 |
| 5.2.2 主要仪器设备 | 第97-98页 |
| 5.3 实验方法 | 第98-101页 |
| 5.3.1 黄嘌呤氧化酶抑制活性的测定 | 第98页 |
| 5.3.2 分子对接 | 第98页 |
| 5.3.3 对香豆醛及其衍生物的合成方法 | 第98-100页 |
| 5.3.4 合成产物表征 | 第100页 |
| 5.3.5 对香豆醛抑制黄嘌呤氧化酶机制的研究 | 第100页 |
| 5.3.6 数据分析 | 第100-101页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第101-114页 |
| 5.4.1 对香豆醛苯环上的基团对黄嘌呤氧化酶抑制活性影响的研究 | 第101-102页 |
| 5.4.2 对香豆醛与黄嘌呤氧化酶的分子对接 | 第102-104页 |
| 5.4.3 对香豆醛及其衍生物的合成 | 第104-109页 |
| 5.4.4 对香豆醛及其衍生物的黄嘌呤氧化酶抑制活性及构效关系的探讨 | 第109-111页 |
| 5.4.5 对香豆醛抑制黄嘌呤氧化酶机制的探讨 | 第111-114页 |
| 5.5 本章小结 | 第114-115页 |
| 参考文献 | 第115-118页 |
| 结论与展望 | 第118-121页 |
| 1. 结论 | 第118-119页 |
| 2. 论文创新点 | 第119页 |
| 3. 展望 | 第119-121页 |
| 攻读博期间论文发表情况 | 第121-122页 |
| 致谢 | 第122-124页 |
| 附件 | 第124页 |
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