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当前位置:教育论文中心首页--硕士论文--2,4-D降解菌的筛选、鉴定及其降解特性研究
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2,4-D降解菌的筛选、鉴定及其降解特性研究
 
     论文目录
 
摘要第3-5页
ABSTRACT第5-6页
术语与缩略语表第10-11页
1.文献综述第11-23页
    1.1 农药污染生物修复第11页
    1.2 农药微生物降解第11-17页
        1.2.1 农药微生物降解菌第12-14页
            1.2.1.1 真菌第12-13页
            1.2.1.2 细菌第13-14页
            1.2.1.3 放线菌和藻类第14页
        1.2.2 农药微生物降解的影响因素第14-15页
            1.2.2.1 农药的分子结构与浓度第14页
            1.2.2.2 微生物的影响第14-15页
            1.2.2.3 环境因素第15页
        1.2.3 农药微生物降解反应机理第15-17页
            1.2.3.1 酶促降解第15-16页
            1.2.3.2 非酶促降解第16-17页
    1.3 苯氧羧酸类除草剂微生物降解第17-18页
    1.4 2,4-D的概况第18-20页
        1.4.1 2,4-D的理化性质第18-19页
        1.4.2 2,4-D的除草机理第19页
        1.4.3 2,4-D的危害第19-20页
    1.5 2,4-D的环境行为第20-23页
        1.5.1 土壤吸附第20页
        1.5.2 环境中的降解第20-23页
            1.5.2.1 水中降解第20-21页
            1.5.2.2 土壤中降解第21页
            1.5.2.3 光化学降解第21页
            1.5.2.4 微生物降解第21-23页
2.引言第23-25页
    2.1 研究目的和意义第23-24页
    2.2 研究内容第24-25页
3.材料与方法第25-37页
    3.1 实验材料第25-27页
        3.1.1 供试土样第25页
        3.1.2 供试药品第25-26页
        3.1.3 仪器设备第26页
        3.1.4 培养基第26页
        3.1.5 2,4-D标准母液及工作溶液的配制第26-27页
    3.2 2,4-D降解菌的筛选、分离与鉴定第27-30页
        3.2.1 2,4-D降解菌富集培养第27页
        3.2.2 降解菌的分离与纯化第27页
        3.2.3 降解菌株的形态特征及生理生化鉴定第27页
        3.2.4 降解菌株 16S rDNA序列的测定与分子鉴定第27-30页
            3.2.4.1 降解菌基因组DNA提取第27页
            3.2.4.2 细菌 16S rDNA的片段的扩增与产物纯化第27-28页
            3.2.4.3 降解菌的 16S rDNA克隆与测序第28-30页
    3.3 降解菌株T1的生长曲线第30页
    3.4 降解菌株T1适宜生长温度与pH测定第30-31页
    3.5 降解菌株T1数量与OD值之间的对应关系测定第31页
    3.6 2,4-D无机盐添加回收实验第31页
        3.6.1 前处理方法第31页
        3.6.2 2,4-D的HPLC检测条件第31页
    3.7 降解菌株T1对 2,4-D的降解特性研究第31-32页
        3.7.1 初始浓度对菌株T1降解 2,4-D的影响第31-32页
        3.7.2 温度对菌株T1降解 2,4-D的影响第32页
        3.7.3 pH对菌株T1降解 2,4-D的影响第32页
        3.7.4 接菌量对菌株T1降解 2,4-D的影响第32页
    3.8 降解菌株T1的降解谱测定第32-33页
        3.8.1 降解谱实验方法第32-33页
        3.8.2 HPLC检测条件第33页
    3.9 菌株T1对 2,4-D的降解代谢产物研究第33-35页
        3.9.1 产物制备过程第33页
        3.9.2 GC-MS/MS检测条件第33-34页
        3.9.3 UPLC-MS/MS检测条件第34-35页
            3.9.3.1 液谱条件第34页
            3.9.3.2 质谱条件第34-35页
    3.10 菌株T1对 2,4-D降解产物 2,4-二氯苯酚(2,4-DCP)和 3, 5-二氯儿茶酚(3, 5-DCC)的降解第35页
    3.11 降解菌株T1菌剂的制备第35-37页
        3.11.1 正交实验设计第35-36页
        3.11.2 菌剂制备方法第36页
        3.11.3 降解菌菌剂的降解活性研究第36-37页
4.结果与分析第37-55页
    4.1 2,4-D降解菌的筛选、分离与鉴定第37-41页
        4.1.1 降解性能的确定第37页
        4.1.2 菌株T1的形态特征及生理生化第37-39页
        4.1.3 菌株T1和T5的 16S rDNA序列分析第39-41页
    4.2 吉氏贪铜菌(Cupriavidus gilardii)的生长曲线第41页
    4.3 吉氏贪铜菌(C. gilardii)适宜生长温度与pH第41-42页
    4.4 吉氏贪铜菌(C. gilardii)数量与OD值之间的对应关系第42页
    4.5 无机盐中 2,4-D添加回收结果第42-43页
    4.6 吉氏贪铜菌(C. gilardii)的降解特性研究第43-47页
        4.6.1 初始浓度对吉氏贪铜菌(C. gilardii)降解 2,4-D的影响第43页
        4.6.2 温度对吉氏贪铜菌(C.gilardii)降解 2,4-D的影响第43-44页
        4.6.3 pH对吉氏贪铜菌(C.gilardii)降解 2,4-D的影响第44-45页
        4.6.4 初始接菌量对吉氏贪铜菌(C.gilardii)降解 2,4-D的影响第45-46页
        4.6.5 吉氏贪铜菌(C.gilardii)的降解谱的测定第46-47页
    4.7 2,4-D的微生物降解途径第47-52页
        4.7.1 2,4-D降解产物分析第47-52页
        4.7.2 吉氏贪铜菌(C. gilardii)对 2,4-D降解产物 2,4-DCP和 3, 5-DCC的降解第52页
    4.8 降解菌吉氏贪铜菌(Cupriavidus gilardii)固定化条件的优化第52-55页
        4.8.1 不同组合降解菌菌剂的物理性能比较第52-53页
        4.8.2 不同组合固定化菌剂对 2,4-D降解的影响第53-54页
        4.8.3 最优组合固定化菌剂对 2,4-D的降解第54-55页
5.讨论第55-57页
6.结论第57-58页
参考文献第58-67页
致谢第67-68页
个人简介第68-69页
附表第69-71页

 
 
论文编号BS3068324,这篇论文共71
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