| 摘要 | 第10-13页 |
| ABSTRACT | 第13-16页 |
| 前言 | 第17-19页 |
| 第一部分 小鼠自身免疫性甲状腺炎模型的建立 | 第19-27页 |
| 材料与方法 | 第19-22页 |
| 1 材料 | 第19-20页 |
| 1.1 实验动物 | 第19页 |
| 1.2 实验药物和主要试剂 | 第19页 |
| 1.3 主要仪器 | 第19-20页 |
| 2.方法 | 第20-22页 |
| 2.1 动物分组 | 第20页 |
| 2.2 建模方法 | 第20页 |
| 2.3 小鼠甲状腺自身抗体水平检测 | 第20-21页 |
| 2.3.1 检测原理 | 第20-21页 |
| 2.3.2 操作步骤 | 第21页 |
| 2.4 数据处理 | 第21-22页 |
| 结果 | 第22-24页 |
| 1 一般状况 | 第22页 |
| 2 小鼠TGAb抗体水平 | 第22-24页 |
| 讨论 | 第24-26页 |
| 结论 | 第26-27页 |
| 第二部分 白芍总苷对EAT小鼠Th17/Treg轴的影响 | 第27-64页 |
| 材料与方法 | 第27-40页 |
| 1 材料 | 第27-30页 |
| 1.1 主要试剂 | 第27-29页 |
| 1.1.1 流式荧光抗体 | 第27页 |
| 1.1.2 主要试剂和耗材 | 第27-29页 |
| 1.1.3 实验药物 | 第29页 |
| 1.1.4 常用溶液配制 | 第29页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第29-30页 |
| 2 方法 | 第30-39页 |
| 2.1 动物分组 | 第30页 |
| 2.2 给药方法 | 第30页 |
| 2.3 制备脾细胞悬液 | 第30-31页 |
| 2.4 Real-time PCR | 第31-33页 |
| 2.4.1 引物序列及大小 | 第31页 |
| 2.4.2 Trizol法抽提总RNA | 第31页 |
| 2.4.3 RNA浓度、纯度检测 | 第31-32页 |
| 2.4.4 逆转录反应 | 第32页 |
| 2.4.5 Real-time PCR | 第32-33页 |
| 2.4.6 Real-time PCR反应特异性鉴定 | 第33页 |
| 2.5 流式细胞术 | 第33-36页 |
| 2.5.1 Foxp3流式检测 | 第33-34页 |
| 2.5.2 IL-17 流式检测 | 第34-36页 |
| 2.6 ELISA实验 | 第36-38页 |
| 2.6.1 检测TGF beta 1 | 第36-37页 |
| 2.6.2 检测IL-17 | 第37-38页 |
| 2.7 小鼠外周血TGAb水平的检测 | 第38-39页 |
| 3 数据处理 | 第39页 |
| 4 技术路线 | 第39-40页 |
| 结果 | 第40-59页 |
| 1 Foxp3 mRNA和IL-17 mRNA的表达情况 | 第40-44页 |
| 2 流式细胞术检测结果 | 第44-53页 |
| 2.1 小鼠脾细胞中CD4~+CD25~+Foxp3~+T细胞比例检测结果 | 第44-48页 |
| 2.2 小鼠脾细胞中分泌IL-17 的T细胞比例检测结果 | 第48-51页 |
| 2.3 小鼠脾细胞中Treg与Th17细胞比值的比较结果 | 第51-53页 |
| 3 小鼠血清TGF beta1和IL-17 水平检测结果 | 第53-57页 |
| 4 小鼠外周血TGAb水平的检测结果 | 第57-59页 |
| 讨论 | 第59-63页 |
| 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-72页 |
| 综述 | 第72-89页 |
| 参考文献 | 第82-89页 |
| 附录 1 | 第89-90页 |
| 作者简介及读研期间主要科研成果 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91页 |
广告服务 
