符号说明 | 第5-9页 |
摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-12页 |
1 前言 | 第13-23页 |
1.1 鸡传染性贫血病毒病原学研究 | 第13-16页 |
1.1.1 CIAV的发现与命名 | 第13-14页 |
1.1.2 CIAV的形态学及理化性质 | 第14页 |
1.1.3 CIAV的基因组结构及编码蛋白特性 | 第14-16页 |
1.2 鸡传染性贫血病毒流行病学 | 第16-18页 |
1.2.1 发生与分布 | 第16页 |
1.2.2 宿主 | 第16-17页 |
1.2.2.1 自然宿主 | 第16-17页 |
1.2.2.2 实验室宿主系统 | 第17页 |
1.2.3 传播 | 第17-18页 |
1.3 鸡传染性贫血病毒发病机理 | 第18页 |
1.4 鸡传染性贫血病毒病理变化 | 第18-19页 |
1.5 CIAV的诊断技术 | 第19-22页 |
1.5.1 临床诊断 | 第19页 |
1.5.2 病例剖检诊断 | 第19页 |
1.5.3 病原学诊断 | 第19-20页 |
1.5.4 血清学诊断 | 第20-21页 |
1.5.5 分子生物学诊断 | 第21-22页 |
1.6 CIAV的预防和控制 | 第22-23页 |
2 材料与方法 | 第23-34页 |
2.1 试验材料 | 第23-25页 |
2.1.1 毒株 | 第23页 |
2.1.2 疫苗 | 第23页 |
2.1.3 质粒 | 第23页 |
2.1.4 主要试剂以及仪器 | 第23-24页 |
2.1.4.1 试剂 | 第23页 |
2.1.4.2 仪器 | 第23-24页 |
2.1.5 其它主要试剂的配置 | 第24-25页 |
2.2 不同方法检测鸡群中鸡传染性贫血病毒的感染情况 | 第25-31页 |
2.2.1 发病鸡群背景及样品来源 | 第25页 |
2.2.2 血液核酸提取 | 第25页 |
2.2.3 应用Real-time PCR检测鸡群中CIAV感染 | 第25-26页 |
2.2.4 应用PCR结合核酸斑点杂交检测鸡群中CIAV感染 | 第26-30页 |
2.2.4.1 斑点杂交探针的制备 | 第26-27页 |
2.2.4.2 杂交探针的纯化 | 第27-28页 |
2.2.4.3 发病鸡群样品的PCR扩增 | 第28-29页 |
2.2.4.4 PCR扩增样品的斑点杂交检测 | 第29-30页 |
2.2.5 应用RAA方法检测鸡群中CIAV感染 | 第30-31页 |
2.3 CIAV与新城疫弱毒疫苗LaSota株对SPF鸡的协同致病作用 | 第31-34页 |
2.3.1 CIAV-SDLY08 毒株的增殖与定量 | 第31页 |
2.3.2 动物实验设计 | 第31-32页 |
2.3.3 体重及免疫器官指数的情况 | 第32页 |
2.3.4 血细胞分析仪检测鸡红细胞数目的变化 | 第32页 |
2.3.5 应用血凝抑制实验检测新城疫(NDV)抗体 | 第32-34页 |
2.3.5.1 四单位抗原的制备 | 第32-33页 |
2.3.5.2 血凝抑制实验测定NDV抗体滴度 | 第33-34页 |
2.3.6 Real-time PCR检测血液中CIAV的病毒载量 | 第34页 |
3 结果 | 第34-45页 |
3.1 不同方法检测鸡群中鸡传染性贫血病毒的感染情况 | 第34-39页 |
3.1.1 Real-time PCR检测结果 | 第34-35页 |
3.1.2 PCR结合核酸斑点杂交检测结果 | 第35-36页 |
3.1.3 RAA方法检测结果 | 第36-39页 |
3.1.3.1 RAA反应体系及条件 | 第36页 |
3.1.3.2 RAA灵敏性和特异性验证 | 第36-38页 |
3.1.3.3 RAA方法检测应用结果 | 第38-39页 |
3.2 CIAV与新城疫弱毒疫苗LaSota株对SPF鸡的协同致病作用 | 第39-45页 |
3.2.1 不同组SPF鸡的死亡率 | 第39-40页 |
3.2.2 不同组SPF鸡体重差异 | 第40-41页 |
3.2.3 不同组SPF鸡免疫器官指数差异 | 第41-42页 |
3.2.4 不同组SPF鸡红细胞数目的差异 | 第42-43页 |
3.2.5 不同组SPF鸡新城疫抗体的差异 | 第43页 |
3.2.6 不同组SPF鸡 CIAV病毒载量的差异 | 第43-45页 |
4 讨论 | 第45-47页 |
5 结论 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-54页 |
致谢 | 第54-55页 |
攻读学位期间发表论文情况 | 第55页 |