| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 英文缩略词表 | 第16-17页 |
| 第一章 绪论 | 第17-23页 |
| 第二章 多功能纳米载体HMCuS@CaPNPs的构建和表征 | 第23-34页 |
| 1 仪器与试剂 | 第23-24页 |
| 1.1 试剂 | 第23页 |
| 1.2 仪器 | 第23页 |
| 1.3 主要试剂的配制 | 第23-24页 |
| 2 实验内容 | 第24-26页 |
| 2.1 HMCuSNPs的制备 | 第24页 |
| 2.2 HMCuS@CaPNPs的制备 | 第24-25页 |
| 2.3 HMCuS@CaPNPs的形态表征 | 第25-26页 |
| 2.3.1 粒径分布 | 第25页 |
| 2.3.2 透射电子显微镜(TEM)扫描 | 第25页 |
| 2.3.3 原子力显微镜(AFM)扫描 | 第25页 |
| 2.3.4 扫描电子显微镜(SEM) | 第25页 |
| 2.3.5 HMCuS@CaPNPs孔径和比表面积分析 | 第25-26页 |
| 2.4 HMCuS@CaPNPs的pH敏感性考察 | 第26页 |
| 2.5 HMCuS@CaPNPs的体外光热转换效率的考察 | 第26页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第26-33页 |
| 3.1 HMCuS@CaPNPs形态表征 | 第26-30页 |
| 3.1.1 HMCuS@CaPNPs的粒径分布 | 第26-27页 |
| 3.1.2 透射电子显微镜(TEM)扫描图 | 第27-28页 |
| 3.1.3 原子力显微镜(AFM)扫描图 | 第28页 |
| 3.1.4 扫描电子显微镜(SEM)图 | 第28-29页 |
| 3.1.5 HMCuS@CaPNPs孔径和比表面积 | 第29-30页 |
| 3.2 HMCuS@CaPNPs的pH敏感性 | 第30-31页 |
| 3.3 HMCuS@CaPNPs体外光热转化效率 | 第31-33页 |
| 4 本章小结 | 第33-34页 |
| 第三章 HMCuS@CaP-Cur-F68纳米给药系统的构建及性质考察 | 第34-44页 |
| 1 仪器与试剂 | 第34-35页 |
| 1.1 试剂 | 第34页 |
| 1.2 仪器 | 第34页 |
| 1.3 主要试剂的配制 | 第34-35页 |
| 2 实验内容 | 第35-38页 |
| 2.1 Cur含量测定方法的建立 | 第35-36页 |
| 2.1.1 Cur紫外检测波长的确定 | 第35页 |
| 2.1.2 高效液相法(HPLC)测定Cur的含量 | 第35-36页 |
| 2.1.3 准确度实验 | 第36页 |
| 2.1.4 精密度实验 | 第36页 |
| 2.2 载药率的测定及最佳投料比的选择 | 第36-37页 |
| 2.3 HMCuS@CaP-Cur-F68稳定性考察 | 第37页 |
| 2.4 HMCuS@CaP-Cur-F68体外药物释放考察 | 第37-38页 |
| 2.4.1 透析袋的预处理 | 第37页 |
| 2.4.2 释放介质的配制 | 第37页 |
| 2.4.3 HMCuS@CaP-Cur-F68的体外释药行为考察 | 第37-38页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第38-43页 |
| 3.1 Cur、HMCuS@CaP-Cur-F68含量测定 | 第38-40页 |
| 3.1.1 Cur、HMCuS@CaP-Cur-F68的UV-Vis全波长扫描图 | 第38-39页 |
| 3.1.2 Cur的标准曲线 | 第39页 |
| 3.1.3 准确度 | 第39-40页 |
| 3.1.4 精密度 | 第40页 |
| 3.2 载药率的测定及最佳投料比的确定 | 第40-41页 |
| 3.3 HMCuS@CaP-Cur-F68的稳定性 | 第41-42页 |
| 3.4 HMCuS@CaP-Cur-F68体外药物释放 | 第42-43页 |
| 4 本章小结 | 第43-44页 |
| 第四章 HMCuS@CaP-Cur-F68体外抗肿瘤活性研究 | 第44-59页 |
| 1 仪器与试剂 | 第44-45页 |
| 1.1 试剂 | 第44页 |
| 1.2 仪器 | 第44-45页 |
| 1.3 主要试剂的配制 | 第45页 |
| 2 实验内容 | 第45-49页 |
| 2.1 细胞毒性考察 | 第45-46页 |
| 2.1.1 CCK-8试剂盒法检测细胞毒性 | 第45页 |
| 2.1.2 HMCuS@CaPNPs对MCF-7和HS578Bst细胞毒性考察 | 第45-46页 |
| 2.1.3 HMCuS@CaP-Cur-F68对MCF-7细胞抑制率的考察 | 第46页 |
| 2.2 HMCuS@CaP-Cur-F68在溶酶体内的分布 | 第46页 |
| 2.3 HMCuS@CaPNPs对细胞内Ca~2+的显著增强 | 第46-47页 |
| 2.4 线粒体内Ca~2+的分布 | 第47页 |
| 2.5 HMCuS@CaP-Cur-F68对线粒体的影响 | 第47-48页 |
| 2.5.1 HMCuS@CaP-Cur-F68对线粒体膜电位的影响 | 第47页 |
| 2.5.2 HMCuS@CaP-Cur-F68对细胞内ATP含量的影响 | 第47-48页 |
| 2.6 Western测定Cyto-c,Caspase-3和Bcl-2的含量 | 第48-49页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第49-57页 |
| 3.1 HMCuS@CaPNPs对MCF-7和HS578Bst细胞毒性考察 | 第49-50页 |
| 3.2 HMCuS@CaP-Cur-F68对MCF-7细胞的抑制率考察 | 第50-51页 |
| 3.3 HMCuS@CaP-Cur-F68在溶酶体内的分布 | 第51-52页 |
| 3.4 HMCuS@CaPNPs对细胞内Ca~2+的影响 | 第52页 |
| 3.5 线粒体内Ca~2+的分布 | 第52-53页 |
| 3.6 HMCuS@CaP-Cur-F68对线粒体的影响 | 第53-56页 |
| 3.6.1 HMCuS@CaP-Cur-F68对线粒体膜电位的影响 | 第53-54页 |
| 3.6.2 HMCuS@CaP-Cur-F68对细胞内ATP含量的影响 | 第54-56页 |
| 3.7 Western检测细胞内Cyto-c,Caspase-3和Bcl-2的含量 | 第56-57页 |
| 4 本章小结 | 第57-59页 |
| 第五章 HMCuS@CaP-Cur-F68体内抗肿瘤活性研究 | 第59-70页 |
| 1 仪器与试剂 | 第59-60页 |
| 1.1 试剂 | 第59页 |
| 1.2 仪器 | 第59-60页 |
| 1.3 主要试剂的配制 | 第60页 |
| 2 实验内容 | 第60-62页 |
| 2.1 实验动物的饲养 | 第60页 |
| 2.2 MCF-7细胞荷瘤裸鼠模型的构建 | 第60-61页 |
| 2.3 单次给药后不同时间载体HMCuS@CaPNPs的体内分布考察 | 第61页 |
| 2.4 HMCuS@CaP-Cur-F68的体内光热转换效率的考察 | 第61页 |
| 2.5 HMCuS@CaP-Cur-F68的药效学考察 | 第61-62页 |
| 2.5.1 HMCuS@CaP-Cur-F68对MCF-7细胞荷瘤裸鼠的肿瘤抑制率考察 | 第61-62页 |
| 2.5.2 MCF-7细胞荷瘤裸鼠的病理切片分析 | 第62页 |
| 2.5.3 肿瘤组织细胞凋亡的考察 | 第62页 |
| 2.6 HMCuS@CaPNPs的体内代谢考察 | 第62页 |
| 2.6.1 ICP-MS检测Cu~2+的浓度 | 第62页 |
| 2.6.2 组织样本中Cu~2+的检测 | 第62页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第62-68页 |
| 3.1 HMCuS@CaP/IR783体内组织分布 | 第62-63页 |
| 3.2 HMCuS@CaP-Cur-F68体内光热转化效率 | 第63-64页 |
| 3.3 HMCuS@CaP-Cur-F68体内抗肿瘤活性评价 | 第64-67页 |
| 3.3.1 荷瘤裸鼠生长状态及体重变化 | 第64-65页 |
| 3.3.2 HMCuS@CaP-Cur-F68对瘤体积变化的影响 | 第65-66页 |
| 3.3.3 HE染色切片分析 | 第66-67页 |
| 3.3.4 肿瘤组织TUNEL凋亡切片分析 | 第67页 |
| 3.4 HMCuS@CaPNPs体内代谢行为考察 | 第67-68页 |
| 4 本章小结 | 第68-70页 |
| 全文总结 | 第70-73页 |
| 参考文献 | 第73-79页 |
| 个人简介 | 第79-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
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