| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 目录 | 第9-11页 |
| 主要缩略词 | 第11-12页 |
| 1 绪论 | 第12-30页 |
| 1.1 问题的提出及研究意义 | 第12-15页 |
| 1.1.1 构建用于神经干细胞体外三维培养的阵列基底 | 第12-13页 |
| 1.1.2 基于 TMRM 的细胞电生物物理评价方法 | 第13-15页 |
| 1.2 国内外研究现状 | 第15-26页 |
| 1.2.1 基于 MEMS 的细胞体外培养技术的研究现状 | 第15-17页 |
| 1.2.2 凹形结构在细胞培养中的应用及细胞在其中的生长行为分析 | 第17-20页 |
| 1.2.3 细胞力学模型的研究进展 | 第20-23页 |
| 1.2.4 基于 TMRM 的电位检测方法的研究现状 | 第23-26页 |
| 1.3 本文研究的目的和研究内容 | 第26-30页 |
| 1.3.1 本文研究的目的 | 第26页 |
| 1.3.2 本文研究的主要内容 | 第26-27页 |
| 1.3.3 本文研究的创新点 | 第27-30页 |
| 2 微小凹图式的制备及与 C17.2 细胞的初步复合 | 第30-44页 |
| 2.1 引言 | 第30-31页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第31-35页 |
| 2.2.1 实验试剂与仪器 | 第31-32页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第32-35页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第35-41页 |
| 2.3.1 硅主模和 PDMS 模具的加工 | 第35-36页 |
| 2.3.2 微小凹图式基底的制备 | 第36-37页 |
| 2.3.3 微小凹图式表面的亲水化处理及表征 | 第37-39页 |
| 2.3.4 C17.2 细胞与不同材料微小凹图式的初步复合 | 第39-40页 |
| 2.3.5 细胞在微小凹中的干细胞特性考察 | 第40-41页 |
| 2.4 小结 | 第41-44页 |
| 3 微小凹内三维细胞聚集体的形成 | 第44-60页 |
| 3.1 引言 | 第44-45页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第45-47页 |
| 3.2.1 实验试剂与仪器 | 第45页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第45-47页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第47-59页 |
| 3.3.1 C17.2 细胞在微小凹中形成三维细胞聚集体的过程 | 第47-51页 |
| 3.3.2 C17.2 细胞在微小凹中的增殖统计 | 第51-53页 |
| 3.3.3 微小凹中细胞聚集体形成过程的荧光染色及统计分析 | 第53-58页 |
| 3.3.4 C17.2 细胞的骨架和粘着斑蛋白染色 | 第58-59页 |
| 3.4 小结 | 第59-60页 |
| 4 细胞凹面剥离行为的有限元模拟 | 第60-80页 |
| 4.1 引言 | 第60-61页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第61-66页 |
| 4.2.1 实验方法 | 第61-66页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第66-77页 |
| 4.3.1 连孔微小凹模型与平面模型的有限元模拟 | 第66-70页 |
| 4.3.2 影响细胞剥离的力学参数 | 第70-75页 |
| 4.3.3 不同细胞在凹面中的剥离能力 | 第75-77页 |
| 4.4 小结 | 第77-80页 |
| 5 基于 TMRM 的细胞电生物物理评价体系的建立 | 第80-100页 |
| 5.1 引言 | 第80-81页 |
| 5.2 实验材料与方法 | 第81-86页 |
| 5.2.1 实验试剂与仪器 | 第81页 |
| 5.2.2 实验方法 | 第81-86页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第86-98页 |
| 5.3.1 TMRM 荧光强度的线性标定 | 第86-87页 |
| 5.3.2 TMRM 检测参数的确立 | 第87-89页 |
| 5.3.3 TMRM 染料的荧光红移分析 | 第89-90页 |
| 5.3.4 TMRM 非特异性吸附的标定 | 第90-91页 |
| 5.3.5 梯度去极化时 RMP 检测及膜片钳验证 | 第91-92页 |
| 5.3.6 胞内钠离子浓度的检测方法的建立 | 第92-94页 |
| 5.3.7 钠钾通透性比值检测方法的建立 | 第94-96页 |
| 5.3.8 与 Loew 的方法和课题组前期的方法进行对比 | 第96-98页 |
| 5.4 小结 | 第98-100页 |
| 6 C17.2 细胞在不同生长状态中的电生物物理特性 | 第100-114页 |
| 6.1 引言 | 第100页 |
| 6.2 实验材料与方法 | 第100-104页 |
| 6.2.1 实验试剂与仪器 | 第100-102页 |
| 6.2.2 实验方法 | 第102-104页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第104-112页 |
| 6.3.1 不同培养天数的 C17.2 细胞的电生物物理评价 | 第104-105页 |
| 6.3.2 C17.2 细胞的分化及其电生物物理评价 | 第105-110页 |
| 6.3.3 三维化生长的细胞的电生物物理评价 | 第110-112页 |
| 6.4 小结 | 第112-114页 |
| 7 结论与展望 | 第114-118页 |
| 7.1 主要结论 | 第114-115页 |
| 7.2 后续研究工作的展望 | 第115-118页 |
| 致谢 | 第118-120页 |
| 参考文献 | 第120-134页 |
| 附录 | 第134页 |
| A. 作者在攻读博士学位期间发表的论文目录 | 第134页 |
| B. 作者在攻读博士学位期间取得的科研成果目录 | 第134页 |
| C. 作者在攻读博士学位期间参加的科研项目 | 第134页 |
广告服务 
