摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
第1章 绪论 | 第14-26页 |
1.1 青霉素酰化酶的简介 | 第14页 |
1.1.1 青霉素酰化酶的来源及分类 | 第14页 |
1.1.2 青霉素G酰化酶的结构及催化机理 | 第14页 |
1.2 PGA的固定化 | 第14-20页 |
1.2.1 固定化方法 | 第16-17页 |
1.2.2 固定化载体 | 第17-20页 |
1.3 固定化载体存在的问题 | 第20-21页 |
1.4 温敏性聚合物 | 第21-23页 |
1.4.1 UCST性温敏聚合物 | 第21-22页 |
1.4.2 LCST性温敏聚合物 | 第22-23页 |
1.5 本论文研究意义及研究内容 | 第23-26页 |
1.5.1 本论文研究意义 | 第23页 |
1.5.2 本论文研究内容 | 第23-26页 |
第2章 PDEA-b-PHEMA-b-P(HEMA-co-GMA)合成及其固定化PGA的研究 | 第26-47页 |
2.1 引言 | 第26-27页 |
2.2 实验药品及仪器 | 第27-28页 |
2.2.1 实验药品 | 第27-28页 |
2.2.2 实验仪器 | 第28页 |
2.3 实验部分 | 第28-35页 |
2.3.1 缓冲溶液的配制 | 第28页 |
2.3.2 PGA标准液的配制 | 第28页 |
2.3.3 PG溶液的配制 | 第28-29页 |
2.3.4 显色液的配制 | 第29页 |
2.3.5 6 -APA最大吸收波长的测定 | 第29页 |
2.3.6 6 -APA浓度与吸光度的关系 | 第29页 |
2.3.7 P(HEMA-co-GMA)的合成 | 第29-30页 |
2.3.8 三硫代十二烷酸-2-氰基异丙基(CPDTC)的合成 | 第30-31页 |
2.3.9 温敏性聚合物的合成 | 第31-32页 |
2.3.10 ~1HNMR表征 | 第32-33页 |
2.3.11 GPC表征 | 第33页 |
2.3.12 温敏性表征 | 第33页 |
2.3.13 PGA的固定化 | 第33页 |
2.3.14 固定化PGA酶活回收率的测定 | 第33-34页 |
2.3.15 响应速率的测定 | 第34-35页 |
2.4 结果与讨论 | 第35-46页 |
2.4.1 ~1HNMR表征结果 | 第35-39页 |
2.4.2 HEMA与 GMA的竞聚率 | 第39-41页 |
2.4.3 聚合物的分子量及其分布 | 第41-42页 |
2.4.4 HEMA含量对固定化PGA酶活力的影响 | 第42页 |
2.4.5 不同单体比例与聚合物温敏性间的关系 | 第42-44页 |
2.4.6 载体的响应速率 | 第44页 |
2.4.7 靶点间距与固定化PGA酶活回收率的关系 | 第44-46页 |
2.5 本章小结 | 第46-47页 |
第3章 PDEA-b-PHEMA-b-P(MMA-co-GMA)合成及其固定化PGA的研究 | 第47-59页 |
3.1 引言 | 第47页 |
3.2 实验药品及仪器 | 第47-48页 |
3.2.1 实验药品 | 第47-48页 |
3.2.2 实验仪器 | 第48页 |
3.3 实验部分 | 第48-50页 |
3.3.1 缓冲溶液的配制 | 第48页 |
3.3.2 PGA标准液的配制 | 第48页 |
3.3.3 PG溶液的配制 | 第48页 |
3.3.4 显色液的配制 | 第48页 |
3.3.5 6 -APA最大吸收波长的测定 | 第48页 |
3.3.6 6 -APA浓度与吸光度的关系 | 第48页 |
3.3.7 P(MMA-co-GMA)的合成 | 第48-49页 |
3.3.8 三硫代十二烷酸-2-氰基异丙基(CPDTC)的合成 | 第49页 |
3.3.9 温敏性聚合物的合成 | 第49页 |
3.3.10 ~1HNMR表征 | 第49-50页 |
3.3.11 GPC表征 | 第50页 |
3.3.12 温敏性表征 | 第50页 |
3.3.13 PGA的固定化 | 第50页 |
3.3.14 固定化PGA酶活回收率的测定 | 第50页 |
3.3.15 响应速率的测定 | 第50页 |
3.4 结果与讨论 | 第50-58页 |
3.4.1 ~1H NMR表征结果 | 第50-52页 |
3.4.2 MMA和 GMA的竞聚率 | 第52-54页 |
3.4.3 聚合物的分子量及其分布 | 第54-55页 |
3.4.4 聚合物的温敏性分析 | 第55-56页 |
3.4.5 载体的响应速率 | 第56页 |
3.4.6 靶点间距与固定化PGA酶活回收率的关系 | 第56-58页 |
3.5 本章小结 | 第58-59页 |
第4章 固定化条件对固定化PGA酶活力影响的研究 | 第59-66页 |
4.1 引言 | 第59页 |
4.2 实验药品及仪器 | 第59页 |
4.2.1 实验药品 | 第59页 |
4.2.2 实验仪器 | 第59页 |
4.3 实验部分 | 第59-60页 |
4.3.1 缓冲溶液的配制 | 第59-60页 |
4.3.2 PGA标准液的配制 | 第60页 |
4.3.3 PG溶液的配制 | 第60页 |
4.3.4 显色液的配制 | 第60页 |
4.3.5 PGA的固定化 | 第60页 |
4.3.6 重复使用性 | 第60页 |
4.3.7 储存稳定性 | 第60页 |
4.4 结果与讨论 | 第60-65页 |
4.4.1 固定化pH对 PGA的影响 | 第60-61页 |
4.4.2 酶液浓度对PGA的影响 | 第61-62页 |
4.4.3 固定化时间对PGA的影响 | 第62-63页 |
4.4.4 固定化温度对PGA的影响 | 第63-64页 |
4.4.5 固定化PGA重复使用性 | 第64页 |
4.4.6 固定化PGA储存稳定性 | 第64-65页 |
4.5 本章小结 | 第65-66页 |
结论 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-74页 |
致谢 | 第74-75页 |
附录 A 攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第75页 |