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Bacillus sp.C3细胞色素P450:CYP102A16基因的克隆、优化表达及其酶性质研究 |
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论文目录 |
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致谢 | 第1-9页 | 摘要 | 第9-11页 | Abstract | 第11-13页 | 第1章 文献综述 | 第13-24页 | ·细胞色素P450酶概述 | 第13-16页 | ·细胞色素P450酶的命名 | 第13-14页 | ·细胞色素P450酶的分布 | 第14页 | ·细胞色素P450酶的催化循环机制 | 第14-15页 | ·细胞色素P450酶的功能 | 第15-16页 | ·细菌细胞色素P450酶系 | 第16-18页 | ·细胞色素P450酶的异源表达 | 第18-21页 | ·细胞色素P450酶的异源表达系统 | 第19页 | ·细胞色素P450酶的异源表达优化 | 第19-21页 | ·细胞色素P450酶在环境污染治理方面的应用 | 第21-22页 | ·本研究的目的及研究内容 | 第22-24页 | 第2章 CYP102A16的克隆表达及纯化 | 第24-40页 | ·材料 | 第24-26页 | ·菌种和质粒 | 第24页 | ·分子生物学试剂及试剂盒 | 第24页 | ·化学试剂 | 第24-25页 | ·培养基和缓冲液 | 第25-26页 | ·仪器设备 | 第26页 | ·实验方法 | 第26-34页 | ·Bacillus sp.C3基因组的提取 | 第26页 | ·Bacillus sp.C3细胞色素P450酶CYP102A16基因的克隆与测序 | 第26-28页 | ·重组质粒pET28a(+)-CYP102A16的构建 | 第28-30页 | ·重组质粒转化大肠杆菌感受态细胞 | 第30-31页 | ·重组CYP102A16的表达 | 第31页 | ·亲和层析纯化重组CYP102A16 | 第31-32页 | ·SDS-PAGE | 第32-33页 | ·重组CYP102A16的表达量测定 | 第33页 | ·蛋白质浓度的测定 | 第33-34页 | ·结果与讨论 | 第34-39页 | ·Bacillus sp.C3 P450 CYP102A16基因的克隆 | 第34-35页 | ·CYP102A16基因的表达纯化 | 第35-37页 | ·CYP102A16的序列分析 | 第37-39页 | ·小结 | 第39-40页 | 第3章 CYP102A16的发酵条件优化 | 第40-53页 | ·材料 | 第40页 | ·菌种 | 第40页 | ·材料及试剂 | 第40页 | ·仪器设备 | 第40页 | ·实验方法 | 第40-45页 | ·重组目的菌株的转接活化 | 第40-41页 | ·单因素实验优化发酵条件 | 第41页 | ·响应面设计优化培养基 | 第41-45页 | ·结果和讨论 | 第45-52页 | ·发酵培养条件对重组菌产CYP102A16的影响 | 第45-48页 | ·培养基组分对重组菌产CYP102A16的影响 | 第48-50页 | ·重组菌的菌体生长量及其产CYP102A16量的关系 | 第50-52页 | ·小结 | 第52-53页 | 第4章 CYP102A16酶性质研究 | 第53-68页 | ·材料 | 第53-54页 | ·菌种和酶液 | 第53页 | ·化学试剂 | 第53页 | ·反应缓冲液 | 第53页 | ·仪器设备 | 第53-54页 | ·实验方法 | 第54-57页 | ·CYP102A16酶活测定体系 | 第54页 | ·酶的最适反应温度及热稳定性 | 第54页 | ·酶的最适反应pH及pH稳定性 | 第54页 | ·有机溶剂对酶稳定性的影响 | 第54页 | ·表面活性剂对CYP102A16酶活性的影响 | 第54-55页 | ·金属离子对CYP102A16酶活性的影响 | 第55页 | ·稳态动力学 | 第55页 | ·底物结合常数K_D的测定 | 第55-56页 | ·CYP102A16底物谱筛选 | 第56页 | ·全细胞催化Naphthalene的降解 | 第56页 | ·HPLC分析 | 第56-57页 | ·结果和讨论 | 第57-66页 | ·CYP102A16酶活性及其稳定性 | 第57-62页 | ·酶促反应动力学及底物结合常数K_D | 第62-64页 | ·CYP102A16底物谱 | 第64-66页 | ·小结 | 第66-68页 | 第5章 结论与展望 | 第68-71页 | ·结论 | 第68-69页 | ·创新性 | 第69页 | ·展望 | 第69-71页 | 参考文献 | 第71-78页 | 个人简历 | 第78页 |
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