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亚麻壳培养基质中木酚素类物质的分离鉴定及生物活性研究 |
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论文目录 |
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摘要 | 第2-5页 | ABSTRACT | 第5-8页 | 第一章 绪论 | 第12-20页 | 1.1 亚麻木酚素简介 | 第12-16页 | 1.1.1 亚麻木酚素类物质的活性研究 | 第12-14页 | 1.1.2 木酚素的提取以及分离鉴定 | 第14-16页 | 1.2 金针菇培养简介 | 第16-17页 | 1.2.1 金针菇的保健功能和食用价值 | 第16-17页 | 1.2.2 金针菇培养简介 | 第17页 | 1.3 选题背景、研究意义以及研究内容 | 第17-20页 | 1.3.1 选题背景以及研究意义 | 第17-18页 | 1.3.2 研究内容和思路 | 第18-20页 | 第二章 亚麻壳培养金针菇条件的优化 | 第20-27页 | 2.1 试剂、材料与仪器 | 第20-21页 | 2.1.1 试剂与材料 | 第20-21页 | 2.1.2 仪器 | 第21页 | 2.2 实验方法 | 第21-22页 | 2.2.1 金针菇培养料配方的优化 | 第21-22页 | 2.2.2 亚麻壳培养金针菇最适环境条件的优化 | 第22页 | 2.3 金针菇生长情况的判定 | 第22-23页 | 2.4 结果与讨论 | 第23-26页 | 2.4.1 适宜金针菇生长的物料比的选择 | 第24页 | 2.4.2 适宜金针菇生长的环境条件的选择 | 第24-26页 | 2.5 本章小结 | 第26-27页 | 第三章 亚麻壳培养基质中木酚素类物质的结构鉴定 | 第27-42页 | 3.1 试剂、材料与仪器 | 第27-28页 | 3.1.1 试剂与材料 | 第27页 | 3.1.2 仪器 | 第27-28页 | 3.2 实验方法 | 第28-31页 | 3.2.1 亚麻壳基质中木酚素类物质的提取 | 第28页 | 3.2.2 SDG标准曲线的绘制 | 第28-29页 | 3.2.3 Folin-Ciocalteu法测定总酚含量 | 第29页 | 3.2.4 HPLC定量分析方法 | 第29-30页 | 3.2.5 高效液相色谱-串联质谱分析方法 | 第30-31页 | 3.2.5.1 UPLC/MS实验条件 | 第30页 | 3.2.5.2 质谱条件参数 | 第30-31页 | 3.3 结果与讨论 | 第31-40页 | 3.3.1 亚麻壳基质醇提产物RP-HPLC分离 | 第31-32页 | 3.3.2 SDG标准曲线的绘制 | 第32页 | 3.3.3 UPLC-MS分析 | 第32-38页 | 3.3.4 总酚含量测定 | 第38-40页 | 3.4 本章小结 | 第40-42页 | 第四章 亚麻壳培养基质中木酚素类物质的活性研究 | 第42-53页 | 4.1 试剂与仪器 | 第42-43页 | 4.1.1 试剂与实验材料 | 第42页 | 4.1.2 仪器 | 第42-43页 | 4.2 实验方法 | 第43-45页 | 4.2.1 抗氧化实验(DDPH法) | 第43-44页 | 4.2.2 α-葡萄糖苷酶抑制活性测定 | 第44页 | 4.2.3 抑菌实验(牛津杯法) | 第44-45页 | 4.3 结果与讨论 | 第45-51页 | 4.3.1 抗氧化活性 | 第45-47页 | 4.3.2 降血糖活性 | 第47-49页 | 4.3.3 抑菌活性研究 | 第49-51页 | 4.4 本章小结 | 第51-53页 | 第五章 金针菇培养过程中亚麻壳木酚素类物质的变化趋势 | 第53-64页 | 5.1 试剂、材料与仪器 | 第53-54页 | 5.1.1 试剂与材料 | 第53页 | 5.1.2 仪器 | 第53-54页 | 5.2 实验方法 | 第54-57页 | 5.2.1 金针菇培养 | 第54-55页 | 5.2.2 生物降解过程时间段的选择 | 第55页 | 5.2.3 生物降解程度的判定 | 第55-56页 | 5.2.4 亚麻壳基质中木酚素提取 | 第56页 | 5.2.5 HPLC定量分析 | 第56-57页 | 5.3 结果与讨论 | 第57-63页 | 5.3.1 甲氧基含量的变化 | 第57-58页 | 5.3.2 不同时间段内亚麻壳中木酚素类物质含量的变化 | 第58-61页 | 5.3.3 亚麻壳基质中木酚素类物质的生物活性变化 | 第61-63页 | 5.4 本章小结 | 第63-64页 | 第六章 总结与展望 | 第64-66页 | 6.1 主要实验内容与结论 | 第64-65页 | 6.2 展望 | 第65-66页 | 参考文献 | 第66-74页 | 附录一 | 第74-76页 | 致谢 | 第76-77页 |
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