摘要 | 第2-4页 |
ABSTRACT | 第4-5页 |
1 文献综述 | 第9-16页 |
1.1 亲水有机溶剂/ 无机盐/ 水两相体系 | 第9-10页 |
1.2 木瓜蛋白酶与酪蛋白 | 第10-12页 |
1.2.1 木瓜蛋白酶及其在分解蛋白方面的应用 | 第10-11页 |
1.2.2 酪蛋白 | 第11-12页 |
1.3 转氨反应制备L- 苯丙氨酸 | 第12-13页 |
1.4 青霉素G 裂解制备6-APA | 第13页 |
1.5 脂肪酶与己酸乙酯 | 第13-14页 |
1.6 立题依据及意义 | 第14页 |
1.7 主要研究内容 | 第14-16页 |
2 亲水有机溶剂/水/无机盐新型两相体系的形成 | 第16-23页 |
2.1 实验材料与仪器 | 第16页 |
2.2 实验方法 | 第16-17页 |
2.2.1 亲水有机溶剂/ 无机盐/水两相体系的分相条件 | 第16-17页 |
2.2.2 体系p H 值的测定 | 第17页 |
2.3 实验结果与讨论 | 第17-22页 |
2.3.1 各种亲水有机溶剂/ 无机盐/ 水两相体系的组成 | 第17-20页 |
2.3.2 两相体系的稳定性 | 第20页 |
2.3.3 讨论 | 第20-22页 |
2.4 小结 | 第22-23页 |
3 正丙醇/NaCl/水两相体系中木瓜蛋白酶水解酪蛋白 | 第23-46页 |
3.1 实验材料与仪器 | 第23页 |
3.2 实验方法 | 第23-29页 |
3.2.1 试剂配制 | 第23-24页 |
3.2.2 紫外分光光度法与高效液相色谱法测定酪氨酸 | 第24-25页 |
3.2.2.1 酪氨酸的标准曲线绘制 | 第24页 |
3.2.2.2 紫外分光光度法和高效液相色谱法测定水解样品中的酪氨酸的比较 | 第24-25页 |
3.2.3 测定正丙醇/NaCl/水体系的相图 | 第25-26页 |
3.2.4 测定各种两相体系中酶、底物和产物的分配系数 | 第26页 |
3.2.5 酪蛋白在正丙醇/NaCl/水两相体系中的酶催化水解 | 第26-27页 |
3.2.6 关于酪蛋白水解产生的氨基酸的分析 | 第27-29页 |
3.3 实验结果与讨论 | 第29-44页 |
3.3.1 紫外吸收法与HPLC 法测定酪氨酸的比较 | 第29-32页 |
3.3.1.1 紫外吸收法与HPLC 法的酪氨酸标准曲线绘制 | 第29-31页 |
3.3.1.2 紫外吸收法与HPLC 法测定水解样品中的酪氨酸的比较 | 第31-32页 |
3.3.2 正丙醇/NaCl/水两相体系的相图 | 第32页 |
3.3.3 木瓜蛋白酶、酪蛋白和芳香族氨基酸在几种两相体系中的分配 | 第32-34页 |
3.3.4 5 种体系中酪蛋白的水解情况比较 | 第34-36页 |
3.3.5 温度对正丙醇/NaCl/水两相体系中酪蛋白水解的影响 | 第36-38页 |
3.3.6 pH 对正丙醇/NaCl/水两相体系中酪蛋白水解的影响 | 第38页 |
3.3.7 正丙醇浓度对正丙醇/NaCl/水两相体系中酪蛋白水解的影响 | 第38-39页 |
3.3.8 NaCl浓度对正丙醇/NaCl/水两相体系中酪蛋白水解的影响 | 第39-41页 |
3.3.9 木瓜蛋白酶浓度对正丙醇/NaCl/水两相体系中酪蛋白水解的影响 | 第41-43页 |
3.3.10 酪蛋白浓度对正丙醇/NaCl/水两相体系中酪蛋白水解的影响 | 第43-44页 |
3.4 小结 | 第44-46页 |
4 亲水有机溶剂/无机盐/水两相体系中假单胞菌ATCC11250 转化L-苯丙酮酸为L-苯丙氨酸 | 第46-55页 |
4.1 实验材料与仪器 | 第46-47页 |
4.2 实验方法 | 第47-48页 |
4.2.1 微生物培养 | 第47页 |
4.2.2 微生物菌体生物转化 | 第47-48页 |
4.2.3 L-天冬氨酸和L-苯丙酮酸在两相体系中的分配 | 第48页 |
4.2.4 HPLC 测定条件 | 第48页 |
4.2.5 结果计算 | 第48页 |
4.3 实验结果与讨论 | 第48-54页 |
4.3.1 底物和产物的高效液相色谱图谱 | 第48-49页 |
4.3.2 底物在两相体系中的分配 | 第49-51页 |
4.3.3 pH 对转化率的影响 | 第51页 |
4.3.4 各种体系中的转化率 | 第51-52页 |
4.3.5 NaCl和亲水有机溶剂对转化的影响 | 第52-54页 |
4.3.6 讨论 | 第54页 |
4.4 小结 | 第54-55页 |
5 亲水有机溶剂/无机盐/水两相体系中大肠杆菌ATCC 9637和固定化青霉素酰化酶转化青霉素G为6- 氨基青霉烷酸 | 第55-64页 |
5.1 实验材料与仪器 | 第55-56页 |
5.2 实验方法 | 第56-58页 |
5.2.1 微生物培养 | 第56-57页 |
5.2.2 微生物菌体或固定化酶生物转化 | 第57页 |
5.2.3 HPLC 测定条件 | 第57页 |
5.2.4 PDAB 法(对二甲氨基甲醛法)测定青霉素酰化酶酶活 | 第57-58页 |
5.2.5 结果计算 | 第58页 |
5.3 实验结果与讨论 | 第58-63页 |
5.3.1 PDAB 法(对二甲氨基甲醛法)测定6- APA 的标准曲线 | 第58-59页 |
5.3.2 发酵培养基的比较和优化 | 第59-60页 |
5.3.3 各种体系中的转化率 | 第60-61页 |
5.3.4 pH 对转化率的影响 | 第61页 |
5.3.5 无机盐和亲水有机溶剂对转化率的影响 | 第61-63页 |
5.4 小结 | 第63-64页 |
6 亲水有机溶剂/无机盐/水两相体系中脂肪酶催化合成己酸乙酯 | 第64-70页 |
6.1 实验材料与仪器 | 第64页 |
6.2 实验方法 | 第64-65页 |
6.2.1 脂肪酶催化合成己酸乙酯 | 第64-65页 |
6.2.2 气相色谱测定条件 | 第65页 |
6.3 实验结果与讨论 | 第65-68页 |
6.3.1 几种体系中的转化率 | 第65页 |
6.3.2 水和亲水有机溶剂对转化率的影响 | 第65-67页 |
6.3.3 表面活性剂对转化率的影响 | 第67-68页 |
6.4 小结 | 第68-70页 |
7 疏水有机溶剂中脂肪酶催化合成己酸乙酯 | 第70-79页 |
7.1 实验材料与仪器 | 第70页 |
7.2 实验方法 | 第70-71页 |
7.2.1 脂肪酶催化合成己酸乙酯 | 第70-71页 |
7.2.2 气相色谱测定条件 | 第71页 |
7.3 实验结果与讨论 | 第71-77页 |
7.3.1 有机溶剂介质对酯化反应的影响 | 第71-74页 |
7.3.2 酶催化合成己酸乙酯的条件优化 | 第74-77页 |
7.3.2.1 正己酸与无水乙醇的摩尔比对酶催化合成反应的影响 | 第74-75页 |
7.3.2.2 加酶量对酶催化合成反应的影响 | 第75-77页 |
7.3.2.3 反应时间对酶催化合成反应的影响 | 第77页 |
7.4 小结 | 第77-79页 |
8 结论 | 第79-81页 |
参考文献 | 第81-85页 |
致谢 | 第85-86页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第86-88页 |