| 中文摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-18页 |
| 缩略语 | 第18-20页 |
| 第一章 文献综述 | 第20-45页 |
| 1 角膜及角膜损伤治疗简介 | 第21-27页 |
| ·角膜的基本结构 | 第21-23页 |
| ·角膜上皮层 | 第21页 |
| ·前弹力层 | 第21-22页 |
| ·基质层 | 第22页 |
| ·后弹力层 | 第22页 |
| ·内皮层 | 第22-23页 |
| ·眼表损伤及重建 | 第23-25页 |
| ·结膜移植术 | 第23-24页 |
| ·角膜缘移植术 | 第24页 |
| ·角膜上皮成形术 | 第24页 |
| ·羊膜移植术 | 第24-25页 |
| ·角膜内皮盲及其治疗进展 | 第25-27页 |
| ·无缝线，带后板层角膜的内皮细胞移植 | 第26页 |
| ·无缝线，带后弹力膜的内皮细胞移植 | 第26-27页 |
| ·体外培养角膜内皮细胞的移植 | 第27页 |
| 2 组织工程化角膜 | 第27-45页 |
| ·组织工程学简介 | 第27-28页 |
| ·组织工程角膜的研究进展 | 第28-29页 |
| ·组织工程角膜的种子细胞 | 第29-36页 |
| ·角膜上皮重建的种子细胞 | 第30-33页 |
| ·角膜内皮移植的种子细胞 | 第33-36页 |
| ·构建组织工程角膜的载体 | 第36-44页 |
| ·明胶薄膜 | 第36页 |
| ·羊膜 | 第36-37页 |
| ·角膜基质片 | 第37页 |
| ·胶原 | 第37-38页 |
| ·透明质酸 | 第38-39页 |
| ·甲壳素与壳聚糖 | 第39-42页 |
| ·以后弹力膜为载体行培养的内皮细胞移植 | 第42-44页 |
| ·展望 | 第44-45页 |
| 第二章 组织工程化角膜细胞载体的制备及其性质研究 | 第45-84页 |
| 第一节 羟乙基壳聚糖的制备及其性质研究 | 第45-61页 |
| 1 材料与方法 | 第45-54页 |
| ·材料与仪器 | 第45-46页 |
| ·实验材料与试剂 | 第45-46页 |
| ·主要仪器 | 第46页 |
| ·HECTS 的制备与纯化 | 第46-47页 |
| ·壳聚糖的纯化 | 第46-47页 |
| ·羟乙基壳聚糖的制备及纯化 | 第47页 |
| ·FTIR 结构表征 | 第47页 |
| ·取代度的测定 | 第47页 |
| ·HECTS 质量指标的测定 | 第47-50页 |
| ·分子量的测定 | 第47-48页 |
| ·旋转黏度的测定 | 第48页 |
| ·水分的测定 | 第48页 |
| ·灰分的测定 | 第48-49页 |
| ·重金属的测定 | 第49-50页 |
| ·蛋白质含量测定 | 第50页 |
| ·HECTS 的细胞毒性 | 第50-52页 |
| ·溶液的配置 | 第50-51页 |
| ·毒性评价方法 | 第51-52页 |
| ·HECTS 对兔角膜上皮及内皮细胞生长的影响 | 第52-54页 |
| ·兔角膜上皮及内皮细胞的体外培养 | 第52-53页 |
| ·HECTS 对兔角膜上皮细胞生长的影响 | 第53页 |
| ·HECTS 对兔角膜内皮细胞生长的影响 | 第53页 |
| ·统计学分析 | 第53-54页 |
| 2 实验结果 | 第54-59页 |
| ·HECTS 的制备 | 第54页 |
| ·HECTS 的FTIR 表征 | 第54-55页 |
| ·取代度的测定 | 第55-56页 |
| ·HECTS 性质指标 | 第56页 |
| ·HECTS 细胞毒性 | 第56-58页 |
| ·HECTS 对角膜上皮和内皮细胞生长的影响 | 第58-59页 |
| 3 讨论 | 第59-60页 |
| 4 本节小结 | 第60-61页 |
| 第二节 羟乙基壳聚糖共混膜的制备及其性质研究 | 第61-84页 |
| 1 材料与方法 | 第61-69页 |
| ·实验材料与试剂 | 第61-62页 |
| ·主要仪器 | 第62页 |
| ·HECTS 共混膜的制备及无菌处理 | 第62-63页 |
| ·共混膜的理化性质的测定 | 第63-64页 |
| ·膜片的透光率 | 第63页 |
| ·膜片的含水量 | 第63页 |
| ·离子通透性的测定 | 第63页 |
| ·膜片对葡萄糖通透性的测定 | 第63-64页 |
| ·共混膜的细胞毒性评价 | 第64-65页 |
| ·兔角膜基质细胞与HECTS 共混膜的相容性评价 | 第65-66页 |
| ·兔角膜基质细胞的体外培养 | 第65页 |
| ·兔角膜基质细胞培养于共混膜上 | 第65页 |
| ·荧光显微观察基质细胞在膜片上生长的状态 | 第65-66页 |
| ·兔角膜内皮细胞与HECTS 共混膜的相容性评价 | 第66页 |
| ·兔角膜内皮细胞的体外培养 | 第66页 |
| ·兔角膜内皮细胞培养于共混膜上 | 第66页 |
| ·内皮细胞在膜片上生长的超微结构观察 | 第66页 |
| ·HECTS 共混膜的体外酶解 | 第66页 |
| ·HECTS 共混膜的体内降解性及组织相容性评价 | 第66-67页 |
| ·HECTS 共混膜在兔眼前房内的降解性及生物相容性评价 | 第67-69页 |
| ·手术方法 | 第67-68页 |
| ·术后处理及常规观察 | 第68页 |
| ·组织切片观察 | 第68-69页 |
| ·统计学分析 | 第69页 |
| 2 实验结果 | 第69-81页 |
| ·共混膜的理化性质 | 第69-72页 |
| ·膜片的透光率 | 第69-70页 |
| ·膜片的含水量和离子通透性 | 第70-71页 |
| ·膜片对葡萄糖的通透性 | 第71-72页 |
| ·共混膜的细胞毒性 | 第72页 |
| ·HECTS 共混膜与兔角膜基质细胞的相容性 | 第72-74页 |
| ·基质细胞在共混膜上的生长状态 | 第72-73页 |
| ·基质细胞在共混膜上的荧光染色观察 | 第73-74页 |
| ·HECTS 共混膜与兔角膜内皮细胞的相容性 | 第74-78页 |
| ·角膜内皮细胞的体外培养 | 第74-75页 |
| ·角膜内皮细胞在膜上的显微观察 | 第75-77页 |
| ·角膜内皮细胞在共混膜上超微结构观察 | 第77-78页 |
| ·HECTS 共混膜的体外酶解 | 第78页 |
| ·HECTS 共混膜的体内降解性及组织相容性 | 第78-80页 |
| ·HECTS 共混膜在兔眼前房内的降解性 | 第80-81页 |
| ·共混膜片植入兔眼前房后术眼的常规性观察 | 第80-81页 |
| ·共混膜片植入兔眼前房后术眼的组织学观察 | 第81页 |
| 3 讨论 | 第81-82页 |
| 4 本节小结 | 第82-84页 |
| 第三章 组织工程化壳聚糖基膜片对角膜上皮机械损伤修复的研究 | 第84-96页 |
| 1 材料与方法 | 第84-88页 |
| ·实验材料 | 第84-85页 |
| ·主要仪器 | 第85页 |
| ·兔角膜上皮细胞的体外培养 | 第85页 |
| ·角膜上皮细胞在HECTS-1 共混膜上培养 | 第85-86页 |
| ·HECTS 共混膜的制备及无菌处理 | 第85-86页 |
| ·角膜上皮细胞接种于HECTS-1 共混膜上 | 第86页 |
| ·角膜上皮细胞在膜上的显微观察 | 第86页 |
| ·角膜上皮细胞在膜上的荧光显微镜观察 | 第86页 |
| ·载细胞膜片修复机械损伤角膜上皮层 | 第86-88页 |
| ·实验动物 | 第86页 |
| ·手术方案 | 第86-87页 |
| ·术后护理及裂隙灯观察 | 第87页 |
| ·角膜上皮层的扫描电镜及组织切片观察 | 第87-88页 |
| 2 实验结果 | 第88-93页 |
| ·兔角膜上皮细胞的原代和传代培养 | 第88-89页 |
| ·HECTS-1 共混膜上培养的角膜上皮细胞的观察 | 第89-90页 |
| ·载角膜上皮细胞的HECTS-1 膜片对角膜上皮层机械损伤的修复 | 第90-93页 |
| ·术后损伤区的荧光染色观察 | 第90-92页 |
| ·术后损伤区面积的比较 | 第92页 |
| ·组织切片观察 | 第92-93页 |
| ·修复后的角膜上皮扫描电镜观察 | 第93页 |
| 3 讨论 | 第93-94页 |
| 4 本章小结 | 第94-96页 |
| 第四章 多糖水凝胶固定角膜内皮细胞行角膜内皮层原位诱导修复的研究 | 第96-119页 |
| 第一节 水凝胶的生物学性质研究 | 第96-108页 |
| 1 材料与方法 | 第96-101页 |
| ·主要原料与试剂 | 第96-97页 |
| ·主要仪器和设备 | 第97页 |
| ·多糖水凝胶热源的测定 | 第97-98页 |
| ·供试品准备 | 第97-98页 |
| ·实验过程 | 第98页 |
| ·HC 的细胞毒性评价 | 第98页 |
| ·HC 对于角膜内皮细胞生长的影响 | 第98-99页 |
| ·兔角膜内皮细胞的培养 | 第98页 |
| ·HC 对兔角膜内皮细胞生长的影响 | 第98-99页 |
| ·HC 的皮内反应试验 | 第99-100页 |
| ·动物准备 | 第99页 |
| ·皮内注射 | 第99页 |
| ·动物观察 | 第99-100页 |
| ·结果评价 | 第100页 |
| ·HC 体内降解性与生物相容性评价 | 第100-101页 |
| 2 实验结果 | 第101-106页 |
| ·多糖水凝胶内毒素检测 | 第101页 |
| ·HC 的细胞毒性评价 | 第101页 |
| ·HC 凝胶浸提液对角膜内皮细胞生长的影响 | 第101-103页 |
| ·HC 的皮内刺激试验 | 第103-104页 |
| ·肌肉内降解性与生物相容性评价 | 第104-106页 |
| 3 讨论 | 第106页 |
| 4 本节小结 | 第106-108页 |
| 第二节 多糖水凝胶固定角膜内皮细胞对角膜内皮层原位诱导修复研究 | 第108-119页 |
| 1 实验材料与方法 | 第108-110页 |
| ·实验材料和试剂 | 第108页 |
| ·兔眼前房内HC 的降解性与生物相容性评价 | 第108-109页 |
| ·实验动物 | 第108页 |
| ·手术方案 | 第108-109页 |
| ·术后护理 | 第109页 |
| ·术后观察 | 第109页 |
| ·组织切片观察 | 第109页 |
| ·原位形成水凝胶对角膜内皮层的原位修复 | 第109-110页 |
| ·兔角膜内皮细胞的体外培养 | 第109页 |
| ·内皮层的原位修复实验 | 第109-110页 |
| 2 实验结果 | 第110-116页 |
| ·HC 于兔眼前房内的生物降解性与生物相容性评价 | 第110-112页 |
| ·术后常规观察 | 第110-111页 |
| ·组织切片观察 | 第111-112页 |
| ·内皮层原位修复实验 | 第112-116页 |
| ·术后外眼像观察 | 第112-113页 |
| ·扫描电镜观察 | 第113-114页 |
| ·组织学观察 | 第114-115页 |
| ·裂隙灯观察 | 第115-116页 |
| 3 讨论 | 第116-117页 |
| 4 本节小结 | 第117-119页 |
| 全文总结 | 第119-121页 |
| 论文创新点及不足 | 第121-122页 |
| 参考文献 | 第122-136页 |
| 致谢 | 第136-137页 |
| 个人简历 | 第137-138页 |
| 博士期间发表的学术论文 | 第138页 |
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