| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 中英文缩略词 | 第11-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-15页 |
| 第二章 材料与方法 | 第15-22页 |
| 2.1 材料 | 第15-16页 |
| 2.1.1 动物 | 第15页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第15页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第15-16页 |
| 2.2 方法 | 第16-21页 |
| 2.2.1 建立慢性气道炎症模型 | 第16页 |
| 2.2.2 收集标本 | 第16页 |
| 2.2.3 BALF中炎性细胞分类计数 | 第16-17页 |
| 2.2.4 BALF中IgE、OVA特异性IgE及细胞因子含量的测定 | 第17页 |
| 2.2.5 制备组织切片 | 第17-18页 |
| 2.2.6 HE染色 | 第18页 |
| 2.2.7 PAS染色 | 第18页 |
| 2.2.8 Masson染色 | 第18页 |
| 2.2.9 羟脯氨酸检测 | 第18-19页 |
| 2.2.10 免疫荧光 | 第19页 |
| 2.2.11 免疫组化 | 第19-20页 |
| 2.2.12 蛋白提取和定量 | 第20页 |
| 2.2.13 免疫印迹 | 第20-21页 |
| 2.2.14 Real-time PCR法检测肺组织HO-1、Nrf2 mRNA的表达 | 第21页 |
| 2.3 统计学方法 | 第21-22页 |
| 第三章 结果 | 第22-32页 |
| 3.1 虎杖苷改善哮喘小鼠气道炎症 | 第22-25页 |
| 3.1.1 虎杖苷减少小鼠BALF中的炎性细胞总数及分类细胞数 | 第22页 |
| 3.1.2 虎杖苷减少BALF中总IgE及OVA特异性IgE浓度 | 第22-23页 |
| 3.1.3 虎杖苷调节BALF中Th1/Th2细胞因子的平衡 | 第23-24页 |
| 3.1.4 组织病理学观察虎杖苷对小鼠气道炎症的影响 | 第24-25页 |
| 3.2 虎杖苷对气道重塑的影响 | 第25-28页 |
| 3.2.1 Masson染色 | 第25-26页 |
| 3.2.2 虎杖苷对胶原纤维的影响 | 第26-27页 |
| 3.2.3 虎杖苷抑制支气管平滑肌的增生 | 第27-28页 |
| 3.3 虎杖苷通过AMPK/Nrf2/HO-1途径改善哮喘小鼠气道炎症和气道重塑 | 第28-32页 |
| 3.3.1 虎杖苷促进AMPK的磷酸化 | 第28-29页 |
| 3.3.2 虎杖苷诱导HO-1、Nrf2的mRNA水平的表达 | 第29页 |
| 3.3.3 虎杖苷促进Nrf2的活化 | 第29-31页 |
| 3.3.4 虎杖苷促进HO-1的表达 | 第31-32页 |
| 第四章 讨论 | 第32-36页 |
| 结论 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-41页 |
| 致谢 | 第41-42页 |
| 综述 虎杖苷通过AMPK/Nrf2/H0-1通路对哮喘气道炎症及气道重塑的作用 | 第42-64页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 附录 攻读学位期间发表论文目录 | 第64页 |
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