| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-16页 |
| 1 绪论 | 第16-47页 |
| ·固定化酶的研究进展 | 第16-22页 |
| ·酶的固定化方法概述 | 第17-19页 |
| ·固定化酶的制备原则 | 第19页 |
| ·固定化酶的特性 | 第19-20页 |
| ·固定化酶载体的研究进展 | 第20-22页 |
| ·固定化酶的应用概况 | 第22-23页 |
| ·辣根过氧化物酶的研究进展 | 第23-27页 |
| ·辣根过氧化物酶的简介 | 第23-24页 |
| ·辣根过氧化物酶的应用现状 | 第24-25页 |
| ·固定辣根过氧化物酶的载体简介 | 第25-27页 |
| ·含酚废水及其去除方法 | 第27-30页 |
| ·含酚废水 | 第27-28页 |
| ·含酚废水的处理方法 | 第28-30页 |
| ·本课题的研究内容与创新性 | 第30-33页 |
| ·主要研究内容 | 第30-31页 |
| ·主要创新点 | 第31-33页 |
| 参考文献 | 第33-47页 |
| 2 双功能载体 EDA-PGMA/SiO_2的制备及其固酶特性的研究 | 第47-65页 |
| ·实验试剂及仪器 | 第47-49页 |
| ·试剂 | 第47-48页 |
| ·仪器 | 第48-49页 |
| ·实验部分 | 第49-52页 |
| ·双功能复合载体 EDA-PGMA/SiO_2的制备与表征 | 第49-51页 |
| ·双功能复合载体 EDA-PGMA/SiO_2固定 HRP 的特性研究 | 第51-52页 |
| ·结果与讨论 | 第52-61页 |
| ·制备双功能复合载体 EDA-PGMA/SiO_2的反应过程 | 第52-53页 |
| ·双功能复合载体 EDA-PGMA/SiO_2的表征 | 第53-55页 |
| ·双功能复合载体制备过程中乙二胺的键合率随时间的变化 | 第55-56页 |
| ·双功能载体 EDA-PGMA/SiO_2固定辣根过氧化物酶的特性 | 第56-59页 |
| ·疏水相互作用在酶固定化过程中的作用 | 第59-61页 |
| ·本章小结 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-65页 |
| 3 双功能载体 SHBS-PGMA/SiO_2的制备及其固酶特性的研究 | 第65-80页 |
| ·实验试剂及仪器 | 第65-66页 |
| ·试剂 | 第65-66页 |
| ·仪器 | 第66页 |
| ·实验部分 | 第66-70页 |
| ·双功能复合载体 SHBS-PGMA/SiO_2的制备与表征 | 第66-68页 |
| ·双功能复合载体 SHBS-PGMA/SiO_2固定 HRP 的特性研究 | 第68-70页 |
| ·结果与讨论 | 第70-78页 |
| ·制备双功能复合载体 SHBA-PGMA/SiO_2的反应过程 | 第70-71页 |
| ·双功能复合载体 SHBS-PGMA/SiO_2的表征 | 第71-73页 |
| ·双功能复合载体制备过程中对羟基苯磺酸钠的键合率随时间的变化 | 第73页 |
| ·双功能载体 SHBS-PGMA/SiO_2固定辣根过氧化物酶的特性 | 第73-77页 |
| ·离子强度对载体与酶蛋白之间静电作用力的影响 | 第77-78页 |
| ·本章小结 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-80页 |
| 4 胺基载体 DETA-CPAN 的固酶特性及最适固酶条件的研究 | 第80-93页 |
| ·实验原料与仪器 | 第80-81页 |
| ·实验原料 | 第80页 |
| ·仪器 | 第80-81页 |
| ·实验部分 | 第81-83页 |
| ·胺基载体 DETA-CPAN 的表征 | 第81-82页 |
| ·胺基载体 DETA-CPAN 固定 HRP 的特性研究 | 第82-83页 |
| ·结果与讨论 | 第83-90页 |
| ·胺基载体 DETA-CPAN 的表征 | 第83-85页 |
| ·HRP 在胺基载体 DETA-CPAN 上的固定化过程 | 第85页 |
| ·胺基载体 DETA-CPAN 固定化 HRP 的条件 | 第85-90页 |
| ·本章小结 | 第90-92页 |
| 参考文献 | 第92-93页 |
| 5 固定化辣根过氧化物酶的酶学性质研究 | 第93-101页 |
| ·实验原料与仪器 | 第93-94页 |
| ·实验原料 | 第93页 |
| ·仪器 | 第93-94页 |
| ·实验部分 | 第94-96页 |
| ·溶液酶和固定化酶酶活力的测定 | 第94-95页 |
| ·酶催化反应适宜条件的考察 | 第95页 |
| ·米氏常数的测定 | 第95-96页 |
| ·结果与讨论 | 第96-98页 |
| ·酶促反应的最适 pH | 第96-97页 |
| ·酶促反应的最适温度 | 第97-98页 |
| ·游离酶和固定化酶的 Km | 第98页 |
| ·本章小结 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-101页 |
| 6 固定化辣根过氧化物酶在苯酚氧化降解过程中的催化作用 | 第101-111页 |
| ·实验原料与仪器 | 第101-102页 |
| ·实验原料 | 第101页 |
| ·仪器 | 第101-102页 |
| ·实验部分 | 第102-104页 |
| ·苯酚在固定化酶催化下的氧化降解实验 | 第102页 |
| ·苯酚含量及苯酚去除率的测定 | 第102-103页 |
| ·考察主要因素对固定化酶催化氧化降解苯酚反应的影响 | 第103-104页 |
| ·结果与讨论 | 第104-109页 |
| ·处理时间对固定化 HRP 处理苯酚的影响 | 第104-105页 |
| ·H_2O_2浓度对固定化 HRP 处理苯酚的影响 | 第105-106页 |
| ·苯酚浓度对固定化 HRP 处理苯酚的影响 | 第106-107页 |
| ·酶用量对固定化 HRP 处理苯酚的影响 | 第107-108页 |
| ·固定化酶的循环使用 | 第108-109页 |
| ·本章小结 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-111页 |
| 结论 | 第111-113页 |
| 博士期间取得的成果 | 第113-115页 |
| 致谢 | 第115页 |
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