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TAT肽—阿霉素磁性脂质体的制备及初步实验研究 |
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论文目录 |
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中文摘要 | 第1-9页 | Abstract | 第9-11页 | 英文缩略词表 | 第11-13页 | 前言 | 第13-18页 | 第一章 阿霉素脂质体体外分析方法的建立 | 第18-26页 | 1. 仪器与试药 | 第18-19页 | ·仪器 | 第18页 | ·试药 | 第18-19页 | 2. 方法与结果 | 第19-25页 | ·含量测定方法学的建立 | 第19-22页 | ·测定波长的确定 | 第19页 | ·标准曲线的绘制 | 第19-20页 | ·精密度试验 | 第20-21页 | ·稳定性试验 | 第21页 | ·回收率试验 | 第21-22页 | ·包封率检测方法的建立 | 第22-25页 | ·阿霉素脂质体制备预实验 | 第23页 | ·总药量测定方法 | 第23页 | ·游离药物测定方法 | 第23-25页 | 3. 讨论与小结 | 第25-26页 | ·讨论 | 第25页 | ·小结 | 第25-26页 | 第二章 磁性阿霉素脂质体制备方法筛选及制备工艺的研究 | 第26-39页 | 1. 仪器与试药 | 第26-27页 | ·仪器 | 第26-27页 | ·试药 | 第27页 | 2 实验方法与结果 | 第27-36页 | ·阿霉素脂质体制备处方和制备工艺筛选 | 第27-34页 | ·脂质体制备方法的选择 | 第27-28页 | ·空白脂质体制备条件的优化 | 第28-30页 | ·单因素考察脂质体的处方和工艺 | 第30-31页 | ·正交设计优化脂质体处方和工艺 | 第31-34页 | ·磁性阿霉素脂质体的研制 | 第34-36页 | ·Fe_3O_4的制备 | 第34-35页 | ·TAT 肽修饰磷脂 | 第35页 | ·TAT-阿霉素脂质体和 TAT-Fe_3O_4阿霉素脂质体的制备 | 第35-36页 | 3 讨论与小结 | 第36-39页 | ·讨论 | 第36-38页 | ·小结 | 第38-39页 | 第三章 脂质体的理化性质和体外实验 | 第39-56页 | 1 仪器与材料 | 第39-41页 | ·仪器 | 第39-40页 | ·试药 | 第40页 | ·细胞株 | 第40-41页 | 2 方法与结果 | 第41-54页 | ·脂质体理化性质的研究 | 第41-44页 | ·形态观察 | 第41页 | ·粒径分布与 zeta 电位的测定 | 第41-42页 | ·包封率和含量的测定 | 第42-44页 | ·脂质体的稳定性 | 第44页 | ·脂质体体外释放实验 | 第44-49页 | ·阿霉素在 PBS 溶液中分析方法的建立 | 第44-47页 | ·样品释放度测定 | 第47-49页 | ·脂质体体外细胞实验 | 第49-54页 | ·细胞培养 | 第49-50页 | ·MTT 实验方法 | 第50页 | ·细胞摄取实验 | 第50-51页 | ·细胞毒性实验 | 第51-52页 | ·体外细胞抑制率实验 | 第52-54页 | 3 讨论与小结 | 第54-56页 | ·讨论 | 第54-55页 | ·小结 | 第55-56页 | 第四章 阿霉素脂质体在小鼠体内穿透血脑屏障研究 | 第56-67页 | 1. 材料与仪器 | 第56-57页 | ·实验动物与材料 | 第56页 | ·仪器设备 | 第56-57页 | 2. 实验方法与结果 | 第57-65页 | ·实验动物分组 | 第57页 | ·动物实验方法 | 第57-58页 | ·游离阿霉素注射液的配制 | 第57页 | ·阿霉素脂质体注射液的配制 | 第57页 | ·尾静脉注射剂量的确定 | 第57-58页 | ·给药 | 第58页 | ·组织样本收集 | 第58页 | ·高效液相检测方法的建立 | 第58-62页 | ·色谱条件 | 第58页 | ·生物组织样品处理 | 第58-59页 | ·方法专属性 | 第59页 | ·脑组织标准曲线的建立 | 第59-60页 | ·回收率的测定 | 第60-61页 | ·精密度试验 | 第61-62页 | ·稳定性试验 | 第62页 | ·高效液相法测定组织中阿霉素含量 | 第62-64页 | ·脑组织中铁含量的测定 | 第64-65页 | ·组织样品处理 | 第64页 | ·含量测定 | 第64-65页 | 3 讨论与小结 | 第65-67页 | ·讨论 | 第65-66页 | ·小结 | 第66-67页 | 全文总结 | 第67-68页 | 参考文献 | 第68-73页 | 综述:脑靶向脂质体的研究进展 | 第73-82页 | 参考文献 | 第79-82页 | 作者简介 | 第82-83页 | 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第83-84页 | 致谢 | 第84页 |
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