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水稻OsCOI基因表达载体构建及其遗传转化 |
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| 论文目录 |
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| 缩略语表 | 第1-8页 | | 摘要 | 第8-9页 | | Summary | 第9-10页 | | 第一章 文献综述 | 第10-22页 | | ·水稻耐冷分子机制研究进展 | 第10-14页 | | ·植物低温逆境蛋白的研究进展 | 第11-13页 | | ·植物低温逆境下基因表达谱分析 | 第13-14页 | | ·水稻耐冷基因的研究进展 | 第14-15页 | | ·水稻耐冷基因定位 | 第14-15页 | | ·水稻耐冷基因克隆 | 第15页 | | ·RNAi及基因过表达技术 | 第15-19页 | | ·RNAi技术 | 第15-17页 | | ·基因过表达技术 | 第17-19页 | | ·农杆菌介导的水稻遗传转化 | 第19-21页 | | ·农杆菌介导法的原理 | 第19页 | | ·农杆菌介导转化水稻研究进展 | 第19-20页 | | ·农杆菌介导转化水稻的关键因素 | 第20-21页 | | ·本研究的目的和意义 | 第21-22页 | | 第二章 水稻OsCOI基因过表达载体的构建 | 第22-37页 | | ·材料和方法 | 第22-29页 | | ·植物材料、菌种及质粒 | 第22页 | | ·酶及试剂 | 第22页 | | ·细菌培养基 | 第22-23页 | | ·引物 | 第23页 | | ·水稻叶片DNA的提取 | 第23页 | | ·PCR扩增 | 第23-24页 | | ·目的DNA片段的回收 | 第24页 | | ·大肠杆菌DH5α感受态细胞的制备 | 第24-25页 | | ·加“A”反应与连接反应 | 第25页 | | ·大肠杆菌转化 | 第25-26页 | | ·蓝白斑筛选阳性克隆及质粒提取 | 第26-27页 | | ·阳性克隆的酶切鉴定与测序 | 第27页 | | ·序列比对 | 第27页 | | ·OsCOI 基因植物过表达载体构建 | 第27-28页 | | ·根癌农杆菌感受态细胞的制备 | 第28-29页 | | ·含OsCOI 过表达重组质粒的农杆菌的获得 | 第29页 | | ·结果与分析 | 第29-35页 | | ·OsCOI基因cDNA的扩增 | 第29-30页 | | ·TEasy-OsCOI的酶切验证 | 第30页 | | ·OsCOI基因植物过表达载体pAHLG-OsCOI的酶切验证 | 第30-31页 | | ·OsCOI基因的序列 | 第31-32页 | | ·OsCOI基因的比对及蛋白质结构预测分析 | 第32-34页 | | ·含有过表达重组质粒的农杆菌阳性克隆的鉴定 | 第34-35页 | | ·讨论 | 第35-37页 | | ·水稻OsCOI基因cDNA的克隆 | 第35页 | | ·水稻OsCOI基因的比对分析 | 第35-36页 | | ·水稻OsCOI基因的过表达载体构建 | 第36页 | | ·含有过表达重组质粒的农杆菌阳性克隆的鉴定 | 第36-37页 | | 第三章 水稻OsCOI基因RNAi表达载体的构建 | 第37-47页 | | ·材料和方法 | 第37-42页 | | ·菌种及质粒 | 第37页 | | ·酶及试剂 | 第37-38页 | | ·引物 | 第38页 | | ·PCR扩增 | 第38页 | | ·pEASY-OsCOIRNi连接与转化大肠杆菌 | 第38-39页 | | ·阳性克隆的酶切鉴定与测序 | 第39页 | | ·序列比对 | 第39页 | | ·RNA 干扰表达载体构建 | 第39-42页 | | ·RNAi 重组质粒的农杆菌的获得 | 第42页 | | ·结果与分析 | 第42-45页 | | ·OsCOIRNi片段的扩增 | 第42页 | | ·pEASY-OsCOIRNi的酶切验证 | 第42-43页 | | ·RNAi中间载体p1300-OsCOIRNi1的酶切验证 | 第43页 | | ·RNAi表达载体p1300-OsCOIRNi1/2的酶切验证 | 第43-44页 | | ·OsCOIRNi片段的序列 | 第44页 | | ·含RNAi表达重组质粒的农杆菌阳性克隆的鉴定 | 第44-45页 | | ·讨论 | 第45-47页 | | ·OsCOIRNi片段的扩增 | 第45页 | | ·载体pEASY-OsCOIRNi的构建 | 第45-46页 | | ·RNAi 表达载体p1300-OsCOIRNi1/2的构建 | 第46页 | | ·含RNAi表达重组质粒的农杆菌阳性克隆的鉴定 | 第46-47页 | | 第四章 农杆菌介导的遗传转化 | 第47-58页 | | ·材料和方法 | 第47-52页 | | ·植物材料、菌种及质粒 | 第47-48页 | | ·酶及试剂 | 第48页 | | ·引物 | 第48页 | | ·培养基 | 第48-49页 | | ·农杆菌介导的水稻遗传转化方法 | 第49-51页 | | ·转基因水稻的PCR 检测 | 第51-52页 | | ·结果与分析 | 第52-55页 | | ·水稻愈伤组织的诱导 | 第52页 | | ·抗性愈伤组织的筛选 | 第52页 | | ·抗性愈伤组织分化培养 | 第52-53页 | | ·抗性转化苗的生根培养 | 第53页 | | ·转基因阳性植株的PCR 验证 | 第53-55页 | | ·讨论 | 第55-58页 | | ·农杆菌的选择 | 第55页 | | ·愈伤组织状态对转化的影响 | 第55-56页 | | ·湿度对转化的影响 | 第56页 | | ·抗生素使用浓度 | 第56页 | | ·其他影响转基因效率的因素 | 第56-57页 | | ·转化植株的检测 | 第57-58页 | | 第五章 结 论 | 第58-59页 | | 参考文献 | 第59-65页 | | 致谢 | 第65-66页 | | 作者介绍 | 第66-67页 | | 导师简介 | 第67页 |
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论文编号BS493986，这篇论文共67页
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