| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略语表 | 第7-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-20页 |
| 1.1 生物活性肽简介 | 第12页 |
| 1.2 生物活性肽的酶解法制备 | 第12页 |
| 1.3 生物活性肽分类 | 第12-15页 |
| 1.3.1 抗氧化肽 | 第12-13页 |
| 1.3.2 ACE抑制肽 | 第13页 |
| 1.3.3 抗凝血肽 | 第13-14页 |
| 1.3.4 抑菌肽 | 第14页 |
| 1.3.5 改善记忆肽 | 第14页 |
| 1.3.6 高F值寡肽 | 第14-15页 |
| 1.4 蛋清蛋白抗氧化肽 | 第15-16页 |
| 1.4.1 蛋清蛋白抗氧化肽的研究进展 | 第15-16页 |
| 1.4.2 抗氧化肽的评价方法 | 第16页 |
| 1.5 活性肽体内转运吸收评价方法 | 第16-17页 |
| 1.6 立题背景与研究内容 | 第17-20页 |
| 1.6.1 立题背景 | 第17-18页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第18-20页 |
| 第2章 蛋清蛋白抗氧化肽酶解制备条件优化 | 第20-33页 |
| 2.1 引言 | 第20页 |
| 2.2 材料与设备 | 第20-22页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第20-21页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第21页 |
| 2.2.3 主要溶液的配制 | 第21-22页 |
| 2.3 实验方法 | 第22-23页 |
| 2.3.1 复合酶的筛选 | 第22页 |
| 2.3.2 双缩脲法测蛋清酶解液浓度 | 第22页 |
| 2.3.3 铁离子还原/抗氧化能力（FRAP）检测 | 第22-23页 |
| 2.3.4 酶解条件的单因素实验 | 第23页 |
| 2.3.5 响应面优化酶解条件 | 第23页 |
| 2.3.6 最优酶解条件的验证实验 | 第23页 |
| 2.4 结果 | 第23-30页 |
| 2.4.1 制备蛋清蛋白抗氧化肽的最佳复合酶组合 | 第23-25页 |
| 2.4.2 不同酶解条件对抗氧化活性的影响 | 第25-27页 |
| 2.4.3 响应面模型拟合度分析 | 第27-30页 |
| 2.4.4 最优酶解条件的验证实验 | 第30页 |
| 2.5 讨论 | 第30-31页 |
| 2.5.1 热处理和酶解时间对蛋清蛋白的酶解影响 | 第30-31页 |
| 2.5.2 抗氧化能力检测指标的选择 | 第31页 |
| 2.6 小结 | 第31-33页 |
| 第3章 蛋清蛋白抗氧化肽制备及其螯合物抗氧化活性评价 | 第33-42页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 材料与设备 | 第33-34页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第33页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第33-34页 |
| 3.2.3 主要溶液的配制 | 第34页 |
| 3.3 实验方法 | 第34-36页 |
| 3.3.1 蛋清蛋白抗氧化肽制备 | 第34-35页 |
| 3.3.2 蛋清蛋白抗氧化肽的活性检测 | 第35页 |
| 3.3.3 蛋清蛋白抗氧化肽氨基酸成分分析 | 第35页 |
| 3.3.4 蛋清蛋白抗氧化肽金属螯合物制备 | 第35-36页 |
| 3.3.5 蛋清蛋白抗氧化肽金属螯合物的抗氧化活性检测 | 第36页 |
| 3.4 结果 | 第36-40页 |
| 3.4.1 蛋清蛋白抗氧化肽的FRAP值 | 第36-37页 |
| 3.4.2 蛋清蛋白抗氧化肽的超氧阴离子清除能力 | 第37页 |
| 3.4.3 蛋清蛋白抗氧化肽的氨基酸成分分析 | 第37-38页 |
| 3.4.4 蛋清蛋白抗氧化肽金属螯合物的FRAP值 | 第38-39页 |
| 3.4.5 蛋清蛋白抗氧化肽金属螯合物的超氧阴离子清除能力 | 第39-40页 |
| 3.5 讨论 | 第40-41页 |
| 3.5.1 肽段抗氧化活性的影响因素 | 第40页 |
| 3.5.2 肽与金属离子螯合反应机理 | 第40-41页 |
| 3.6 小结 | 第41-42页 |
| 第4章 蛋清蛋白抗氧化肽微胶囊的制备 | 第42-51页 |
| 4.1 引言 | 第42页 |
| 4.2 材料与设备 | 第42-44页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第42-43页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第43页 |
| 4.2.3 主要溶液的配制 | 第43-44页 |
| 4.3 实验方法 | 第44-46页 |
| 4.3.1 蛋清蛋白抗氧化肽微胶囊的制备 | 第44页 |
| 4.3.2 蛋清蛋白抗氧化肽微胶囊的形态表征 | 第44页 |
| 4.3.3 包埋率的计算 | 第44-45页 |
| 4.3.4 抗氧化肽浓度的测定 | 第45页 |
| 4.3.5 蛋清蛋白抗氧化肽微胶囊体外释放实验 | 第45页 |
| 4.3.6 经模拟胃肠液消化后蛋清蛋白抗氧化肽微胶囊的FRAP值测定 | 第45-46页 |
| 4.4 结果 | 第46-48页 |
| 4.4.1 蛋清蛋白抗氧化肽微胶囊形态与包埋率 | 第46-47页 |
| 4.4.2 蛋清蛋白抗氧化肽微胶囊缓释性能 | 第47页 |
| 4.4.3 蛋清蛋白抗氧化肽微胶囊模拟胃肠消化后的FRAP值 | 第47-48页 |
| 4.5 讨论 | 第48-49页 |
| 4.5.1 锐孔凝固浴法制备微胶囊及其性能 | 第48-49页 |
| 4.5.2 锐孔凝固浴法制备微胶囊的影响因素 | 第49页 |
| 4.6 小结 | 第49-51页 |
| 第5章 蛋清蛋白抗氧化肽生物活性评价 | 第51-68页 |
| 5.1 引言 | 第51页 |
| 5.2 材料与设备 | 第51-53页 |
| 5.2.1 材料与试剂 | 第51-52页 |
| 5.2.2 仪器与设备 | 第52页 |
| 5.2.3 主要溶液配制 | 第52-53页 |
| 5.3 实验方法 | 第53-59页 |
| 5.3.1 蛋清蛋白抗氧化肽致敏性评估 | 第53-56页 |
| 5.3.2 Caco-2 细胞的培养 | 第56页 |
| 5.3.3 蛋清蛋白抗氧化肽的细胞增殖-毒性检测 | 第56-57页 |
| 5.3.4 蛋清蛋白抗氧化肽对细胞氧化损伤的抑制作用 | 第57-58页 |
| 5.3.5 Caco-2 细胞单层膜培养 | 第58页 |
| 5.3.6 Caco-2 细胞单层模型完整性评价 | 第58-59页 |
| 5.3.7 蛋清蛋白抗氧化肽在Caco-2 细胞单层模型的跨膜转运研究 | 第59页 |
| 5.4 结果 | 第59-65页 |
| 5.4.1 最佳抗原包被浓度和一抗稀释倍数 | 第59-60页 |
| 5.4.2 蛋清蛋白抗氧化肽的IgG结合能力 | 第60-61页 |
| 5.4.3 蛋清蛋白抗氧化肽的IgE结合能力 | 第61页 |
| 5.4.4 Caco-2 细胞生长形态 | 第61-62页 |
| 5.4.5 蛋清蛋白抗氧化肽的细胞增殖-毒性 | 第62页 |
| 5.4.6 IL-8 细胞因子浓度 | 第62-63页 |
| 5.4.7 Caco-2 细胞单层模型完整性评价 | 第63页 |
| 5.4.8 蛋清蛋白抗氧化肽在Caco-2 细胞膜上的跨膜转运 | 第63-65页 |
| 5.5 讨论 | 第65-67页 |
| 5.5.1 蛋清蛋白抗氧化肽与IgG、IgE的结合能力 | 第65页 |
| 5.5.2 细胞增殖-毒性评价的检测方法 | 第65-66页 |
| 5.5.3 Caco-2 细胞单层模型的应用 | 第66-67页 |
| 5.6 小结 | 第67-68页 |
| 第6章 结论与展望 | 第68-70页 |
| 6.1 结论 | 第68-69页 |
| 6.2 展望 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第76页 |
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