| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩略语对照表 | 第9-10页 |
| 1. 前言 | 第10-20页 |
| 1.1 蓝细菌简介 | 第10页 |
| 1.2 鱼腥蓝细菌PCC 7120背景介绍 | 第10-12页 |
| 1.2.1 营养细胞的细胞结构 | 第11页 |
| 1.2.2 异形胞的细胞结构 | 第11-12页 |
| 1.3 鱼腥蓝细菌PCC 7120异形胞分化的基因调控网络简介 | 第12-17页 |
| 1.3.1 异形胞分化起始的调控 | 第12-14页 |
| 1.3.2 异形胞分化的其它基因调控 | 第14-15页 |
| 1.3.3 异形胞分化晚期的基因调控 | 第15-17页 |
| 1.4 鱼腥蓝细菌PCC 7120中Sigma因子简介 | 第17-19页 |
| 1.4.1 鱼腥蓝细菌PCC 7120中的RNA聚合酶 | 第17页 |
| 1.4.2 鱼腥蓝细菌PCC 7120中Sigma因子的分类 | 第17-18页 |
| 1.4.3 鱼腥蓝细菌PCC 7120中Sigma因子与异形胞分化的调控 | 第18-19页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第19-20页 |
| 2. 材料与方法 | 第20-35页 |
| 2.1 菌株和质粒 | 第20页 |
| 2.2 常用的培养基配方和培养条件 | 第20-21页 |
| 2.3 常用的分子生物学试剂 | 第21-22页 |
| 2.4 常用的生物试剂和配方 | 第22-23页 |
| 2.4.1 常用的缓冲液和配方 | 第22页 |
| 2.4.2 常用的储存液和配方 | 第22-23页 |
| 2.5 实验方法 | 第23-35页 |
| 2.5.1 构建克隆技术 | 第23-24页 |
| 2.5.2 外源蛋白质的诱导表达和纯化操作 | 第24-26页 |
| 2.5.3 用BradFord法进行蛋白定量 | 第26-27页 |
| 2.5.4 鱼腥蓝细菌PCC 7120 RNA聚合酶各亚基的体外纯化与复原 | 第27-29页 |
| 2.5.5 鱼腥蓝细菌PCC 7120异形胞的缺氮诱导 | 第29页 |
| 2.5.6 鱼腥蓝细菌PCC 7120的三亲本杂交(结合转移) | 第29-30页 |
| 2.5.7 鱼腥蓝细菌PCC 7120总DNA的小量提取 | 第30-31页 |
| 2.5.8 鱼腥蓝细菌PCC 7120 RNA的抽提 | 第31-32页 |
| 2.5.9 实时荧光定量PCR | 第32-35页 |
| 3. 结果与分析 | 第35-53页 |
| 3.1 鱼腥蓝细菌PCC 7120中sigC、sigG两个缺失突变体的构建与筛选 | 第35-39页 |
| 3.1.1 sigC、sigG缺失突变体的构建与筛选 | 第35-36页 |
| 3.1.2 sigC、sigG缺失突变体的验证 | 第36-39页 |
| 3.2 MsigC和MsigG的表型观察 | 第39-40页 |
| 3.3 MsigC和MsigG的互补实验 | 第40-45页 |
| 3.4 异形胞分化有关基因在MsigC和MsigG中的表达 | 第45-51页 |
| 3.4.1 sigC参与hetR和ntcA的表达调控 | 第45-47页 |
| 3.4.2 sigG参与hetR、ntcA和hglD的表达调控 | 第47-51页 |
| 3.5 鱼腥蓝细菌PCC 7120体外转录系统的构建 | 第51-53页 |
| 4. 讨论与展望 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 附录 本研究所用引物 | 第62-64页 |
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