中文摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
第一章 绪论 | 第13-25页 |
1.1 引言 | 第13页 |
1.2 鲍的弧菌病 | 第13-14页 |
1.3 鲍免疫研究进展 | 第14-18页 |
1.3.1 病原相关分子模式(PAMP) | 第15页 |
1.3.2 模式识别蛋白(PRP) | 第15-16页 |
1.3.3 鲍免疫相关通路的研究 | 第16-18页 |
1.4 本研究涉及的基因简介 | 第18-23页 |
1.5 本研究的目的及意义 | 第23页 |
1.6 本文所用简称及缩写 | 第23-25页 |
第二章 皱纹盘鲍不同选育群体对弧菌敏感性差异比较 | 第25-35页 |
2.1 实验材料 | 第25-27页 |
2.1.1 供试皱纹盘鲍 | 第25-26页 |
2.1.2 供试病原弧菌 | 第26-27页 |
2.2 实验方法 | 第27-28页 |
2.2.1 实验菌的准备 | 第27页 |
2.2.2 弧菌注射处理 | 第27-28页 |
2.2.3 数据分析 | 第28页 |
2.3 结果 | 第28-33页 |
2.3.1 皱纹盘鲍97-G6和98-G6幼鲍对溶藻弧菌的敏感性 | 第28-29页 |
2.3.2 皱纹盘鲍97-G6和98-G6幼鲍对哈维氏弧菌的敏感性 | 第29-30页 |
2.3.3 皱纹盘鲍97-G6和98-G6幼鲍对鳗弧菌的敏感性 | 第30-31页 |
2.3.4 皱纹盘鲍97-G6和98-G6幼鲍的对溶藻弧菌和哈维氏弧菌混合菌液敏感性 | 第31-32页 |
2.3.5 皱纹盘鲍97-G6和98-G6幼鲍对3种弧菌混合悬液的敏感性比较 | 第32-33页 |
2.4 讨论 | 第33-35页 |
第三章 皱纹盘鲍抗弧菌筛选的初步研究 | 第35-41页 |
3.1 实验材料 | 第35页 |
3.2 实验方法 | 第35-37页 |
3.2.1 实验菌的准备 | 第35-36页 |
3.2.2 弧菌注射处理 | 第36-37页 |
3.3 实验结果 | 第37-40页 |
3.3.1 R1群体的筛选 | 第37页 |
3.3.2 R2群体的筛选 | 第37-38页 |
3.3.3 R1群体的筛选效果验证 | 第38页 |
3.3.4 R2群体对溶藻弧菌的抗性检验 | 第38-39页 |
3.3.5 R2群体对哈维氏弧菌的抗性检验 | 第39-40页 |
3.3.6 R2群体对鳗弧菌的抗性检验 | 第40页 |
3.4 讨论 | 第40-41页 |
第四章 皱纹盘鲍97-G6幼鲍对弧菌抗性的分子机制研究 | 第41-62页 |
4.1 实验材料 | 第41页 |
4.2 实验方法 | 第41-48页 |
4.2.1 组织总RNA提取 | 第42-43页 |
4.2.2 反转录 | 第43页 |
4.2.3 RT-PCR实验体系 | 第43-44页 |
4.2.4 RT-PCR标准曲线的建立: | 第44-45页 |
4.2.5 RT-PCR的扩增曲线及溶解曲线分析 | 第45-48页 |
4.2.6 RT-PCR数据处理 | 第48页 |
4.3 实验结果分析及讨论 | 第48-61页 |
4.3.1 皱纹盘鲍防御素基因(Defensin)表达的组织特异性分析 | 第48-49页 |
4.3.2 皱纹盘鲍防御素基因(Defensin)在肝胰腺、外套膜和鳃中的时序表达 | 第49-52页 |
4.3.3 皱纹盘鲍溶菌酶基因(Lysozyme)表达的组织特异性分析 | 第52页 |
4.3.4 皱纹盘鲍溶菌酶基因(Lysozyme)在外套膜中的时序表达 | 第52-53页 |
4.3.5 皱纹盘鲍一氧化氮合酶基因(NOS)的组织特异性分析 | 第53-54页 |
4.3.6 皱纹盘鲍一氧化氮合酶基因(NOS)的时序表达 | 第54-55页 |
4.3.7 皱纹盘鲍血蓝蛋白基因(Hemocyanin)的组织表达特异性 | 第55页 |
4.3.8 皱纹盘鲍血蓝蛋白基因(Hemocyanin)的时序表达 | 第55-57页 |
4.3.9 皱纹盘鲍热激蛋白70基因(HSP70)的组织特异性表达 | 第57-58页 |
4.3.10 皱纹盘鲍热激蛋白70基因(HSP70)在外套膜、肝胰腺和鳃中时序表达 | 第58-61页 |
4.4 小结 | 第61-62页 |
第五章 总结及展望 | 第62-64页 |
参考文献 | 第64-72页 |
致谢 | 第72-73页 |
作者简历及攻读学位期间发表的学术论文 | 第73-74页 |