英文缩略表 | 第4-9页 |
中文摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
1 引言 | 第14-26页 |
1.1 一氧化氮的概述 | 第14-18页 |
1.1.1 一氧化氮的生物学特性 | 第15-16页 |
1.1.2 一氧化氮的生物合成和一氧化氮合酶的分类 | 第16-17页 |
1.1.3 一氧化氮合酶在脑内的分布 | 第17-18页 |
1.2 阿尔茨海默症的研究进展 | 第18-22页 |
1.2.1 阿尔茨海默症模型的研究进展 | 第19-22页 |
1.3 NO 与阿尔茨海默症 | 第22-23页 |
1.4 NOS 抑制剂与阿尔茨海默症 | 第23-24页 |
1.5 盐酸多奈哌齐与阿尔茨海默症 | 第24页 |
1.6 本课题的研究目的和意义 | 第24-26页 |
2 材料与方法 | 第26-32页 |
2.1 试验材料 | 第26-27页 |
2.1.1 试验动物 | 第26页 |
2.1.2 主要试剂 | 第26页 |
2.1.3 主要试验仪器 | 第26页 |
2.1.4 试验场地及预备试验 | 第26-27页 |
2.2 试验方法 | 第27-32页 |
2.2.1 分组及其给药方法 | 第27页 |
2.2.2 Morris 水迷宫行为学测试 | 第27页 |
2.2.3 取材 | 第27-28页 |
2.2.3.1 小鼠血清的分离 | 第27-28页 |
2.2.3.2 脑组织取样和脑匀浆液的制备 | 第28页 |
2.2.4 脑切片制作 | 第28页 |
2.2.5 HE 染色 | 第28页 |
2.2.6 Highman 甲醇刚果红染色法 | 第28页 |
2.2.7 SABC 免疫组织化学染色 | 第28-29页 |
2.2.8 切片观察和测量 | 第29页 |
2.2.9 NO 浓度(含量)的测定 | 第29-30页 |
2.2.10 NOS 活性的测定 | 第30-31页 |
2.2.10.1 脑组织蛋白质含量的测定 | 第30页 |
2.2.10.2 NOS 活性测定步骤 | 第30-31页 |
2.2.11 数据统计与分析 | 第31-32页 |
3 结果与分析 | 第32-45页 |
3.1 各组小鼠行为学检测结果 | 第32-33页 |
3.2 各组小鼠 NO 检测结果 | 第33-35页 |
3.2.1 各组小鼠血清 NO 含量变化检测结果 | 第33-34页 |
3.2.2 各组小鼠海马 NO 含量变化的检测结果 | 第34-35页 |
3.3 各组小鼠 NOS 活性检测结果 | 第35-37页 |
3.3.1 各组小鼠海马 TNOS 活性检测结果 | 第35-36页 |
3.3.2 各组小鼠海马 iNOS 活性的检测结果 | 第36-37页 |
3.4 各组小鼠海马 nNOS 阳性神经元的形态结构与分布 | 第37-41页 |
3.4.1 各组小鼠海马 nNOS 阳性神经元密度的变化 | 第37-38页 |
3.4.2 各组小鼠海马 nNOS 神经元胞体截面积的变化 | 第38-39页 |
3.4.3 各组小鼠海马 nNOS 神经元最长突起长度的变化 | 第39-40页 |
3.4.4 各组小鼠海马 nNOS 神经元第一级突起数的变化 | 第40-41页 |
3.5 各组小鼠海马 iNOS 阳性神经元的形态结构与分布 | 第41-45页 |
3.5.1 各组小鼠海马 iNOS 阳性神经元密度的变化 | 第41-42页 |
3.5.2 各组小鼠海马 iNOS 阳性神经元胞体截面积的变化 | 第42页 |
3.5.3 各组小鼠海马 iNOS 神经元最长突起长度的变化 | 第42-43页 |
3.5.4 各组小鼠海马 iNOS 神经元第一级突起数的变化 | 第43-45页 |
4 讨论 | 第45-49页 |
4.1 AD 模型的选择及 Morris 水迷宫对 AD 小鼠的学习与记忆能力的评价 | 第45页 |
4.2 AD 小鼠海马 nNOS 阳性神经元凋亡机制 | 第45-46页 |
4.3 AD 造模不同时间脑海马 NOS 活性及 NO 含量的变化 | 第46-47页 |
4.4 AD 脑海马 nNOS 阳性神经元的分布、数量及形态结构的变化 | 第47-48页 |
4.5 盐酸多奈哌齐和 L-NNA 在 AD 脑海马中的作用机制 | 第48-49页 |
5 结论 | 第49-50页 |
5.1 D-半乳糖联合三氯化铝造模方法 | 第49页 |
5.2 盐酸多奈哌齐在阿尔茨海默症中的保护作用 | 第49页 |
5.3 L-NNA 在阿尔茨海默症中的保护作用 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-58页 |
附图 | 第58-65页 |
致谢 | 第65页 |