| 中文摘要 | 第9-11页 |
| 英文摘要 | 第11-12页 |
| 第一章 前言 | 第13-16页 |
| 1.1 白血病 | 第13页 |
| 1.2 细胞凋亡 | 第13-14页 |
| 1.2.1 凋亡的发现及其特征 | 第13页 |
| 1.2.2 细胞凋亡的信号转导途径 | 第13-14页 |
| 1.3 立题依据、目的及意义 | 第14-16页 |
| 第二章 材料与方法 | 第16-26页 |
| 2.1 实验材料 | 第16-21页 |
| 2.1.1 细胞株及细胞培养 | 第16页 |
| 2.1.2 药品及主要试剂 | 第16-17页 |
| 2.1.3 药品及试剂配制 | 第17-20页 |
| 2.1.4 主要仪器与设备 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-26页 |
| 2.2.1 台盼蓝排斥法考察化合物的细胞生长抑制作用和细胞毒作用 | 第21页 |
| 2.2.2 AO-EB荧光双染法检测细胞凋亡 | 第21-22页 |
| 2.2.3 琼脂糖凝胶电泳 | 第22-23页 |
| 2.2.4 免疫印迹技术检测蛋白表达 | 第23-24页 |
| 2.2.5 流式细胞术检测细胞周期分布 | 第24页 |
| 2.2.6 流式细胞术检测活性氧蓄积 | 第24-25页 |
| 2.2.7 免疫共沉淀试验检测TNFR1复合物的生成 | 第25页 |
| 2.2.8 TNFα检测 | 第25-26页 |
| 第三章 实验结果 | 第26-36页 |
| 3.1 呋喃二烯对HL60细胞株的生长抑制作用 | 第26页 |
| 3.2 流式细胞术检测呋喃二烯对HL60细胞株周期分布的影响 | 第26-27页 |
| 3.3 AO/EB双染法检测呋喃二烯诱导HL60细胞凋亡 | 第27-28页 |
| 3.4 DNA凝胶电泳检测呋喃二烯诱导HL60细胞凋亡 | 第28-29页 |
| 3.5 呋喃二烯对caspase蛋白活性的影响 | 第29-30页 |
| 3.6 呋喃二烯对Bcl-2家族蛋白活性的影响 | 第30页 |
| 3.7 呋喃二烯对细胞内死亡受体表达的影响 | 第30-31页 |
| 3.8 呋喃二烯可明显上调培养基中TNFα水平 | 第31页 |
| 3.9 TNFa-TNFR1结合后细胞内复合物的形成 | 第31-32页 |
| 3.10 可溶性的TNFR1受体可阻断呋喃二烯诱导的细胞凋亡 | 第32-33页 |
| 3.11 呋喃二烯对HL60细胞内活性氧水平的影响 | 第33页 |
| 3.12 抗氧化剂对呋喃二烯凋亡诱导作用的逆转情况 | 第33-34页 |
| 3.13 呋喃二烯对K562和Jurkat细胞株的作用 | 第34-36页 |
| 第四章 讨论 | 第36-39页 |
| 第五章 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-43页 |
| 发表文章目录 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44页 |
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