| 摘要 | 第3-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 第1章 前言 | 第17-19页 |
| 第2章 同型半胱氨酸对大鼠主动脉的损伤 | 第19-27页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-20页 |
| 2.1.1 实验动物和分组 | 第19页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-23页 |
| 2.2.1 主要试剂的配制 | 第20-21页 |
| 2.2.2 动物模型的建立 | 第21页 |
| 2.2.3 获取主动脉标本 | 第21页 |
| 2.2.4 主动脉血管环张力测定 | 第21-22页 |
| 2.2.5 组织石蜡包埋切片及HE染色 | 第22页 |
| 2.2.6 主动脉透射电镜 | 第22-23页 |
| 2.3 统计学处理结果 | 第23页 |
| 2.4 实验结果 | 第23-26页 |
| 2.4.1 血清Hcy浓度 | 第23-24页 |
| 2.4.2 Hcy降低主动脉血管环张力 | 第24-25页 |
| 2.4.3 Hcy损伤主动脉内皮 | 第25-26页 |
| 2.5 讨论 | 第26页 |
| 2.6 小结 | 第26-27页 |
| 第3章 Hcy联合Cu~(2+)损伤主动脉的机制研究 | 第27-45页 |
| 3.1 实验材料 | 第27-28页 |
| 3.1.1 实验动物和分组 | 第27-28页 |
| 3.1.2 主要实验试剂 | 第28页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第28页 |
| 3.2 实验方法 | 第28-33页 |
| 3.2.1 主要试剂的配制 | 第28-30页 |
| 3.2.2 动物模型的建立 | 第30页 |
| 3.2.3 获取主动脉标本 | 第30页 |
| 3.2.4 主动脉血管环张力测定 | 第30页 |
| 3.2.5 组织石蜡包埋切片及HE染色 | 第30-31页 |
| 3.2.6 主动脉透射电镜 | 第31页 |
| 3.2.7 荧光染色法检测主动脉总ROS | 第31页 |
| 3.2.8 荧光染色法检测主动脉eNOS解偶联 | 第31页 |
| 3.2.9 主动脉石蜡包埋切片和免疫组化 | 第31-32页 |
| 3.2.10 血浆乳酸含量测定 | 第32-33页 |
| 3.2.11 主动脉血管环NOX活性检测 | 第33页 |
| 3.3 统计学处理结果 | 第33-34页 |
| 3.4 实验结果 | 第34-42页 |
| 3.4.1 Hcy依赖Cu~(2+)损伤主动脉内皮 | 第34-35页 |
| 3.4.2 Hcy联合Cu~(2+)激活NADPH氧化酶产生ROS | 第35-37页 |
| 3.4.3 Hcy联合Cu~(2+)诱导P47phox、P22phox磷酸化 | 第37-38页 |
| 3.4.4 细胞糖酵解及eNOS解偶联 | 第38-42页 |
| 3.5 讨论 | 第42-44页 |
| 3.6 小结 | 第44-45页 |
| 第4章 纳米铜离子交换剂对主动脉的保护作用 | 第45-56页 |
| 4.1 实验材料 | 第45-47页 |
| 4.1.1 人脐静脉内皮细胞(HUVEC) | 第45页 |
| 4.1.2 实验动物和分组 | 第45页 |
| 4.1.3 主要实验试剂 | 第45-46页 |
| 4.1.4 主要仪器及设备 | 第46页 |
| 4.1.5 实验室器械消毒灭菌准备 | 第46页 |
| 4.1.6 主要试剂的配制 | 第46-47页 |
| 4.2 实验方法 | 第47-50页 |
| 4.2.1 细胞培养 | 第47-49页 |
| 4.2.2 ZnMoS_4与TM半数致死量(LD50)比较 | 第49页 |
| 4.2.3 流式细胞仪测定细胞存活率 | 第49-50页 |
| 4.2.4 主动脉血管环张力检测 | 第50页 |
| 4.2.5 荧光染色法检测主动脉血管ROS | 第50页 |
| 4.2.6 主动脉组织包埋切片HE染色 | 第50页 |
| 4.2.7 主动脉组织包埋切片免疫组化 | 第50页 |
| 4.2.8 主动脉透射电镜 | 第50页 |
| 4.3 实验结果 | 第50-54页 |
| 4.3.1 ZnMoS_4和TM均对细胞有保护作用 | 第50-51页 |
| 4.3.2 LD50显示ZnMoS_4比TM的毒性更小 | 第51-52页 |
| 4.3.3 ZnMoS_4对主动脉血管具有保护作用 | 第52-53页 |
| 4.3.4 ZnMoS_4抑制血管内皮ONOO-产生 | 第53-54页 |
| 4.4 讨论 | 第54-55页 |
| 4.5 小结 | 第55-56页 |
| 第5章 Hcy-Cu~(2+)复合物检测 | 第56-63页 |
| 5.1 实验材料 | 第56页 |
| 5.1.1 主要实验试剂 | 第56页 |
| 5.1.2 主要实验仪器 | 第56页 |
| 5.2 实验方法 | 第56-58页 |
| 5.2.1 Hcy和CuCl_2复合物的配制 | 第56-57页 |
| 5.2.2 基质辅助激光解吸电离质谱法(MALDI-TOF) | 第57页 |
| 5.2.3 高效液相色谱-线性离子阱质谱法 | 第57页 |
| 5.2.4 核磁共振波谱法(~1H NMR) | 第57-58页 |
| 5.3 实验数据 | 第58-62页 |
| 5.3.1 MALDI-TOF数据分析 | 第58-60页 |
| 5.3.2 高效液相色谱-线性离子阱质谱法 | 第60-61页 |
| 5.3.3 核磁共振波谱法(~1H NMR) | 第61-62页 |
| 5.4 讨论 | 第62页 |
| 5.5 小结 | 第62-63页 |
| 全文结论 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-69页 |
| 综述 | 第69-76页 |
| 参考文献 | 第74-76页 |
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