摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
第一章 绪论 | 第12-20页 |
1.1 糖尿病分类及现状 | 第12页 |
1.2 Ⅱ型糖尿病治疗药物简介 | 第12-13页 |
1.3 抑制剂筛选方法研究介绍 | 第13-14页 |
1.4 酶微反应器制备方法及应用介绍 | 第14页 |
1.5 论文的研究意义及内容 | 第14-16页 |
1.5.1 论文的研究意义 | 第14-15页 |
1.5.2 论文的主要内容 | 第15-16页 |
参考文献 | 第16-20页 |
第二章 高效液相色谱-质谱(HPLC-MS)法测定山药皮中活性成分 | 第20-32页 |
2.1 引言 | 第20-21页 |
2.2 仪器和试剂 | 第21-22页 |
2.2.1 仪器 | 第21页 |
2.2.2 试剂 | 第21-22页 |
2.3 实验部分 | 第22-24页 |
2.3.1 山药皮样品溶液的提取 | 第22页 |
2.3.2 9种化合物混合标准溶液的配制 | 第22页 |
2.3.3 高效液相色谱-质谱(HPLC-MS)联用条件 | 第22-23页 |
2.3.4 线性关系以及检出限 | 第23页 |
2.3.5 精密度、重复性、稳定性考察 | 第23页 |
2.3.6 加标回收率、山药皮中活性成分含量以及质谱信息测定 | 第23-24页 |
2.4 结果与讨论 | 第24-29页 |
2.4.1 标准曲线绘制以及山药皮提取液的测定 | 第24-26页 |
2.4.2 精密度实验 | 第26-27页 |
2.4.3 重复性实验 | 第27页 |
2.4.4 稳定性实验 | 第27-28页 |
2.4.5 加标回收率、山药皮中活性成分含量测定 | 第28-29页 |
2.5 本章小结 | 第29-30页 |
参考文献 | 第30-32页 |
第三章 Fe_3O_4MNPs/Fe_3O_4@rGONCMs@α-葡萄糖苷酶纳米微反应器的制备及其在筛选山药皮中酶抑制剂的应用 | 第32-54页 |
3.1 引言 | 第32-35页 |
3.2 仪器和试剂 | 第35页 |
3.2.1 仪器 | 第35页 |
3.2.2 试剂 | 第35页 |
3.3 实验部分 | 第35-39页 |
3.3.1 氨基化Fe_3O_4MNPs/Fe_3O_4@rGONCMs两种纳米材料的合成 | 第35-36页 |
3.3.2 Fe_3O_4MNPs/Fe_3O_4@rGONCMs两种酶微反应器制备条件优化 | 第36-38页 |
3.3.3 怀山药皮提取液中α-葡萄糖苷酶抑制剂筛选 | 第38-39页 |
3.4 结果与讨论 | 第39-49页 |
3.4.1 氨基化Fe_3O_4MNPs/Fe_3O_4@rGONCMs两种纳米材料的表征 | 第39-43页 |
3.4.2 Fe_3O_4@α-葡萄糖苷酶/Fe_3O_4@rGO@α-葡萄糖苷酶两种酶微反应器制备条件优化 | 第43-46页 |
3.4.3 怀山药皮提取液中α-葡萄糖苷酶抑制剂筛选结果 | 第46-49页 |
3.5 本章小结 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-54页 |
第四章 2,4-二甲氧基-6,7-二羟基菲与α-葡萄糖苷酶的相互作用研究 | 第54-70页 |
4.1 引言 | 第54-55页 |
4.2 仪器和试剂 | 第55页 |
4.2.1 仪器 | 第55页 |
4.2.2 试剂 | 第55页 |
4.3 实验部分 | 第55-57页 |
4.3.1 DDP对α-葡萄糖苷酶的抑制活性研究 | 第55-56页 |
4.3.2 DDP对α-葡萄糖苷酶的抑制动力学研究 | 第56-57页 |
4.3.3 圆二色谱实验 | 第57页 |
4.3.4 傅里叶变换衰减全反射红外光谱(ATR-FTIR)实验 | 第57页 |
4.3.5 分子模拟实验 | 第57页 |
4.4 结果与讨论 | 第57-64页 |
4.4.1 DDP与α-葡萄糖苷酶的量效关系实验 | 第57-58页 |
4.4.2 DDP对α-葡萄糖苷酶的抑制动力学结果 | 第58-61页 |
4.4.3 圆二色谱实验结果 | 第61-62页 |
4.4.4 傅里叶变换衰减全反射红外光谱(ATR-FTIR)实验结果 | 第62-63页 |
4.4.5 分子模拟实验结果 | 第63-64页 |
4.5 本章小结 | 第64-66页 |
参考文献 | 第66-70页 |
结论 | 第70-72页 |
攻读学位期间发表的学术论文以及参与项目 | 第72-74页 |
致谢 | 第74-76页 |