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超声联合微泡介导声敏剂入脑胶质瘤的声动力治疗研究 |
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论文目录 |
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摘要 | 第3-5页 | Abstract | 第5-6页 | 第1章 前言 | 第10-24页 | 1.1 声动力治疗 | 第10-13页 | 1.1.1 声动力疗法的发展 | 第10-12页 | 1.1.2 声敏剂分类及发展 | 第12页 | 1.1.3 华卟啉钠的特点 | 第12-13页 | 1.2 血脑屏障 | 第13-17页 | 1.2.1 血脑屏障的结构 | 第13-14页 | 1.2.2 开放血脑屏障的方法 | 第14-16页 | 1.2.3 超声联合微泡开放血脑屏障的进展 | 第16-17页 | 1.3 脑胶质瘤的声动力治疗研究进展 | 第17-21页 | 1.3.1 脑胶质瘤的特点 | 第17页 | 1.3.2 脑胶质瘤的声动力治疗研究现状 | 第17-18页 | 1.3.3 应用DVDMS进行声动力治疗的研究现状 | 第18-20页 | 1.3.4 声动力治疗的可能机制 | 第20-21页 | 1.4 本课题的研究目的与研究内容 | 第21-24页 | 1.4.1 课题来源 | 第21页 | 1.4.2 研究目的 | 第21-22页 | 1.4.3 研究内容 | 第22页 | 1.4.4 论文内容 | 第22-24页 | 第2章 声动力治疗的研究方法 | 第24-43页 | 2.1 低强度超声开放血脑屏障实验平台的建立 | 第24-29页 | 2.1.1 实验平台结构 | 第24-25页 | 2.1.2 声阻抗测试 | 第25-26页 | 2.1.3 声场测试 | 第26-27页 | 2.1.4 声压测试 | 第27-28页 | 2.1.5 声功率测试 | 第28-29页 | 2.2 微泡的制备和性能表征 | 第29-32页 | 2.2.1 制备方法 | 第29-30页 | 2.2.2 性能表征 | 第30-32页 | 2.3 华卟啉钠的吸收光谱和发射光谱测量 | 第32-34页 | 2.3.1 吸收光谱和发射光谱测量 | 第32-33页 | 2.3.2 荧光成像系统评估方法 | 第33-34页 | 2.4 人源脑胶质瘤细胞的培养 | 第34-36页 | 2.4.1 细胞介绍 | 第34页 | 2.4.2 细胞培养过程 | 第34-36页 | 2.5 细胞存活检测方法 | 第36-37页 | 2.6 小动物生物发光成像方法 | 第37-38页 | 2.7 生存数据分析方法 | 第38页 | 2.8 病理组织切片染色 | 第38-40页 | 2.9 免疫组织切片染色 | 第40-41页 | 2.10 统计数据分析方法 | 第41页 | 2.11 小结和讨论 | 第41-43页 | 第3章 声动力治疗方法的参数条件优化 | 第43-53页 | 3.1 体外实验装置结构 | 第43-44页 | 3.2 脑胶质瘤细胞对声敏剂的摄取作用 | 第44-48页 | 3.2.1 U87 MG对 DVDMS的摄入 | 第44页 | 3.2.2 DVDMS进入细胞的时间规律 | 第44-46页 | 3.2.3 声敏剂剂量对摄入作用的影响 | 第46-48页 | 3.3 声敏剂DVDMS细胞毒性分析 | 第48-49页 | 3.4 声动力治疗对脑胶质瘤细胞的参数优化 | 第49-51页 | 3.5 本章小结与讨论 | 第51-53页 | 第4章 声动力治疗脑胶质瘤的体内实验研究 | 第53-68页 | 4.1 人源脑胶质瘤裸鼠颅内原位移植模型 | 第53-55页 | 4.1.1 颅内原位移植实验过程 | 第53-55页 | 4.1.2 颅内肿瘤生长检测 | 第55页 | 4.2 超声联合微泡增强声敏剂入脑效率的研究 | 第55-57页 | 4.2.1 超声微泡开放血脑屏障 | 第55-56页 | 4.2.2 递送效果检测 | 第56-57页 | 4.3 声动力治疗颅内脑胶质瘤动物模型的研究 | 第57-61页 | 4.3.1 实验分组方案 | 第57-58页 | 4.3.2 肿瘤生长抑制效果 | 第58-59页 | 4.3.3 生存数据分析 | 第59-61页 | 4.4 病理及免疫组化分析 | 第61-65页 | 4.4.1 H&E染色结果 | 第62页 | 4.4.2 细胞增殖检测结果 | 第62-64页 | 4.4.3 细胞凋亡检测结果 | 第64-65页 | 4.5 本章小结与讨论 | 第65-68页 | 第5章 总结与展望 | 第68-71页 | 5.1 论文工作内容的总结 | 第68-69页 | 5.2 本论文的创新点 | 第69-70页 | 5.3 未来工作展望 | 第70-71页 | 参考文献 | 第71-74页 | 致谢 | 第74-75页 | 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第75页 |
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