| 缩写词 | 第1-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 第一章 引言 | 第13-24页 |
| 1 植物乙烯代谢的分子生物学研究进展 | 第13-17页 |
| ·乙烯的生物合成途径 | 第13页 |
| ·乙烯代谢中的主要酶 | 第13-16页 |
| ·乙烯信号传导 | 第16-17页 |
| 2 植物 ACS 和 ACO 基因研究进展 | 第17-18页 |
| ·ACS 基因的克隆 | 第18页 |
| ·ACO 基因的克隆 | 第18页 |
| 3 反义技术的主要应用 | 第18-20页 |
| 4 中国水仙生物技术研究进展 | 第20-23页 |
| ·中国水仙愈伤组织的研究 | 第20-21页 |
| ·中国水仙基因工程研究 | 第21-23页 |
| 5 本研究的意义及内容 | 第23-24页 |
| 第二章 中国水仙 ACS 和 ACO 基因克隆 | 第24-60页 |
| 第一节 中国水仙 ACS 基因克隆 | 第24-40页 |
| 1 材料与方法 | 第24-25页 |
| ·材料 | 第24页 |
| ·方法 | 第24-25页 |
| 2 结果与分析 | 第25-39页 |
| ·中国水仙叶片总 RNA 的提取与质量检测 | 第26页 |
| ·中国水仙叶片 ACS 基因 5’RACE 的克隆 | 第26-27页 |
| ·中国水仙叶片 ACS 基因序列拼接 | 第27-29页 |
| ·中国水仙叶片 ACS 基因 CDNA 全长序列分析 | 第29-30页 |
| ·中国水仙叶片 ACS 基因生物信息学分析 | 第30-39页 |
| 3 讨论 | 第39-40页 |
| 第二节 中国水仙 ACO 基因克隆 | 第40-60页 |
| 1 材料与方法 | 第40-42页 |
| ·材料 | 第40-41页 |
| ·方法 | 第41-42页 |
| 2 结果与分析 | 第42-58页 |
| ·中国水仙叶片 ACO 基因保守区克隆结果 | 第42-43页 |
| ·中国水仙叶片 ACO 基因 CDNA 的 3′RACE 克隆结果 | 第43-45页 |
| ·中国水仙叶片 ACO 基因 5′RACE 克隆结果 | 第45-47页 |
| ·中国水仙叶片 ACO 基因全长序列 | 第47-48页 |
| ·中国水仙叶片 ACO 基因全长序列分析 | 第48-49页 |
| ·中国水仙叶片 ACO 基因开放阅读框编码氨基酸序列分析 | 第49-50页 |
| ·中国水仙叶片 ACO 基因生物信息学分析 | 第50-58页 |
| 3 讨论 | 第58-60页 |
| ·中国水仙 ACO 蛋白具有高度的保守性 | 第58页 |
| ·ACO 基因的克隆及研究意义 | 第58-60页 |
| 第三章 中国水仙 ACS 基因反义表达载体构建及转化研究 | 第60-73页 |
| 1 材料与方法 | 第60-63页 |
| ·材料 | 第60页 |
| ·方法 | 第60-63页 |
| 2 结果与分析 | 第63-72页 |
| ·目的片段的克隆结果 | 第64-65页 |
| ·重组质粒的构建和鉴定 | 第65-72页 |
| 3 讨论 | 第72-73页 |
| ·中国水仙 ACS 基因反义表达载体构建中的关键 | 第72页 |
| ·构建中国水仙反义表达载体的意义 | 第72-73页 |
| 第四章 中国水仙愈伤组织培养条件的优化 | 第73-81页 |
| 1 中国水仙愈伤组织的诱导与继代 | 第73-74页 |
| ·材料 | 第73页 |
| ·方法 | 第73-74页 |
| 2 结果与分析 | 第74-79页 |
| ·中国水仙鳞茎盘切块诱导愈伤组织不同类型的性状 | 第74页 |
| ·正交设计不同因素对中国水仙愈伤组织诱导的影响 L9(34)正交试验 | 第74-79页 |
| 3 讨论 | 第79-81页 |
| ·本试验中影响中国水仙鳞茎盘诱导愈伤组织最大因子是 2,4-D | 第79页 |
| ·中国水仙愈伤组织诱导类型及继代增殖中的困难 | 第79页 |
| ·适当时间的低温处理能够提高中国水仙愈伤组织的诱导率 | 第79页 |
| ·二次消毒能够有效降低污染率 | 第79-81页 |
| 第五章 小结 | 第81-85页 |
| 1 中国水仙 ACS 基因的克隆 | 第81-82页 |
| 2 中国水仙 ACO 基因克隆 | 第82-83页 |
| 3 中国水仙 ACS 基因反义表达载体构建 | 第83-84页 |
| 4 中国水仙鳞茎盘诱导愈伤组织 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-90页 |
| 附录 | 第90-100页 |
| 致谢 | 第100页 |
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