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海洋右旋糖酐酶的诱变、产酶及其性质研究 |
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| 论文目录 |
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| 摘要 | 第7-9页 | | ABSTRACT | 第9-10页 | | 第一章 文献综述 | 第11-19页 | | 1 右旋糖苷酶的研究进展 | 第11-19页 | | 1.1 右旋糖苷酶的定义及分类 | 第11页 | | 1.2 右旋糖苷酶的来源 | 第11页 | | 1.3 右旋糖苷酶的应用 | 第11-14页 | | 1.4 常压室温等离子体诱变的研究进展 | 第14-15页 | | 1.5 牙菌斑防治的研究进展 | 第15页 | | 1.6 论文研究的意义和内容 | 第15-19页 | | 第二章 海洋氧化节杆菌KQ11的常压室温等离子体诱变育种 | 第19-33页 | | 1 材料方法 | 第19-20页 | | 1.1 材料 | 第19-20页 | | 2 实验方法 | 第20-23页 | | 2.1 诱变方法 | 第20-21页 | | 2.2 突变菌的遗传稳定性 | 第21页 | | 2.3 突变菌株细胞表面的变化 | 第21-22页 | | 2.4 突变菌株的右旋糖酐酶的分子量 | 第22页 | | 2.5 突变菌酶学性质比较 | 第22-23页 | | 2.6 突变位点的检测 | 第23页 | | 2.7 酶活力的测定 | 第23页 | | 3 结果与分析 | 第23-33页 | | 3.1 突变菌的筛选 | 第23-24页 | | 3.2 突变菌的遗传稳定性 | 第24-25页 | | 3.3 突变菌细胞表面的变化 | 第25-26页 | | 3.4 突变菌株右旋糖苷酶的分子量 | 第26-27页 | | 3.5 突变菌菌株酶学性质的检测 | 第27-28页 | | 3.6 突变位点的检测 | 第28-33页 | | 第三章 突变菌株产酶条件的优化 | 第33-47页 | | 1 试验材料 | 第33页 | | 1.1 材料 | 第33页 | | 2 实验方法 | 第33-35页 | | 2.1 单因素优化 | 第33-34页 | | 2.2 Plackett-Buman和爬坡实验 | 第34-35页 | | 2.3 响应面和中心复合实验 | 第35页 | | 3 结果与分析 | 第35-47页 | | 3.1 单因素实验结果 | 第35-38页 | | 3.2 PB和最陡爬坡实验 | 第38-40页 | | 3.3 响应面和中心复合实验 | 第40-45页 | | 3.4 响应面验证试验 | 第45-47页 | | 第四章 右旋糖苷酶的纯化和性质研究 | 第47-59页 | | 1 材料 | 第47页 | | 1.1 材料 | 第47页 | | 1.2 试剂 | 第47页 | | 1.3 培养基配方 | 第47页 | | 2 方法 | 第47-49页 | | 2.1 酶活力测定 | 第47页 | | 2.2 突变菌4-13工程菌的构建 | 第47-48页 | | 2.3 右旋糖苷酶的纯化 | 第48页 | | 2.4 纯酶酶学性质研究 | 第48-49页 | | 2.5 纯酶的底物特异性 | 第49页 | | 2.6 纯酶的反应终产物 | 第49页 | | 3 结果与分析 | 第49-59页 | | 3.1 工程菌的构建 | 第49-50页 | | 3.2 右旋糖苷酶的纯化 | 第50-52页 | | 3.3 纯酶的酶学性质 | 第52-54页 | | 3.4 纯酶的底物特异性 | 第54-55页 | | 3.5 最终水解产物分析 | 第55-59页 | | 第五章 右旋糖酐酶的应用 | 第59-67页 | | 1 实验材料 | 第59页 | | 1.1 菌株来源 | 第59页 | | 1.2 实验材料 | 第59页 | | 2 试验方法 | 第59-60页 | | 2.1 药物最低抑制生物膜浓度 | 第59页 | | 2.2 右旋糖苷酶对正在形成的生物膜的抑制 | 第59-60页 | | 2.3 右旋糖苷酶对不同时间生物膜形成的影响 | 第60页 | | 2.4 右旋糖苷酶对已形成的生物膜的清除作用 | 第60页 | | 3 实验结果 | 第60-67页 | | 3.1 药物最低抑制生物膜浓度 | 第60-61页 | | 3.2 右旋糖苷酶对培养不同时间的生物膜的影响 | 第61-63页 | | 3.3 右旋糖苷酶对不同时间生物膜形成的影响 | 第63-64页 | | 3.4 右旋糖苷酶对已形成的生物膜的清除 | 第64-67页 | | 全文结论 | 第67-69页 | | 创新点 | 第69-71页 | | 参考文献 | 第71-79页 | | 攻读硕士期间发表的论文 | 第79-81页 | | 致谢 | 第81页 |
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论文编号BS2478991，这篇论文共81页
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