| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-16页 |
| 绪论 | 第16-44页 |
| 1 海洋微藻与海洋异养细菌间相互作用的研究概述 | 第16-20页 |
| ·藻菌互利共生 | 第16-17页 |
| ·藻菌互相拮抗 | 第17-20页 |
| 2 细菌的群体感应系统概述 | 第20-26页 |
| ·AHLs 介导的革兰氏阴性菌群体感应系统 | 第21-23页 |
| ·AIP 物质介导的革兰氏阳性菌群体感应系统 | 第23-24页 |
| ·呋喃硼酸二酯介导的细菌种属间群体感应系统 LuxS/AI-2 型的信息系统 | 第24-26页 |
| ·其它信号分子介导的群体感应系统 | 第26页 |
| 3 AHLS 信号分子启动植物的应激反应并调控植物的生长发育 | 第26-28页 |
| ·AHLs 信号分子启动植物的应激反应 | 第26-27页 |
| ·AHLs 信号分子调控植物的生长发育 | 第27-28页 |
| 4 干扰 AHLS 信号分子介导的群体感应系统的研究概述 | 第28-33页 |
| ·抑制 AHLs 信号分子的合成 | 第29页 |
| ·AHLs 信号分子的降解酶 | 第29-31页 |
| ·利用 AHLs 信号分子的类似物干扰基于 AHLs 的群体感应系统 | 第31-33页 |
| 5 立题背景及研究内容 | 第33-35页 |
| 参考文献 | 第35-44页 |
| 第一章 小球藻优势共栖异养细菌的分离鉴定及其群体感应信号分子活性测定 | 第44-60页 |
| 前言 | 第44页 |
| 1 材料 | 第44-48页 |
| ·实验微藻及培养 | 第44-45页 |
| ·实验菌株与培养 | 第45页 |
| ·试剂及用具 | 第45-48页 |
| ·主要仪器 | 第48页 |
| 2 方法 | 第48-50页 |
| ·小球藻共栖异养优势菌株的建立 | 第48页 |
| ·革兰氏染色流程 | 第48-49页 |
| ·细菌鉴定流程 | 第49页 |
| ·优势共栖细菌的 AHLs 信号分子活性的检测 | 第49-50页 |
| 3 结果 | 第50-54页 |
| ·小球藻共栖异养细菌的菌落形态及革兰氏染色特征 | 第50页 |
| ·小球藻共栖异养细菌的数量特征 | 第50-51页 |
| ·小球藻优势共栖异养细菌的种属鉴定 | 第51-52页 |
| ·小球藻优势共栖菌株培养过程中 AHLs 信号分子活性的变化 | 第52-54页 |
| 4 讨论 | 第54-56页 |
| 5 小结 | 第56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 第二章 小球藻无菌培养体系的建立及对优势共栖异养细菌群体感应信号分子活性的影响 | 第60-69页 |
| 前言 | 第60页 |
| 1 材料 | 第60-61页 |
| ·实验微藻及培养 | 第60-61页 |
| ·实验菌株与培养 | 第61页 |
| ·实验试剂 | 第61页 |
| 2 方法 | 第61-62页 |
| ·小球藻无菌培养体系的建立 | 第61-62页 |
| ·小球藻滤液对优势共栖异养细菌 AHLs 信号分子活性的影响 | 第62页 |
| ·数据统计 | 第62页 |
| 3 结果 | 第62-65页 |
| ·小球藻无菌培养体系的建立 | 第62-63页 |
| ·小球藻无菌培养体系的验证 | 第63页 |
| ·小球藻对优势共栖异养细菌 AHLs 信号分子活性的影响 | 第63-65页 |
| 4 讨论 | 第65-66页 |
| 5 小结 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-69页 |
| 第三章 小球藻与优势共栖异养细菌相互作用过程中群体感应信号分子活性的变化 | 第69-83页 |
| 前言 | 第69页 |
| 1 材料 | 第69-70页 |
| ·实验微藻及培养 | 第69-70页 |
| ·实验菌株与培养 | 第70页 |
| 2 方法 | 第70-71页 |
| ·实验设计 | 第70页 |
| ·叶绿素 a 含量测定 | 第70-71页 |
| ·数据统计 | 第71页 |
| 3 结果 | 第71-78页 |
| 4 讨论 | 第78-80页 |
| 5 小结 | 第80页 |
| 参考文献 | 第80-83页 |
| 第四章 群体感应信号分子对小球藻生长及抗氧化酶系统的影响 | 第83-94页 |
| 前言 | 第83页 |
| 1 材料 | 第83-84页 |
| ·无菌小球藻培养体系的建立 | 第83-84页 |
| ·药品与试剂 | 第84页 |
| 2 方法 | 第84-86页 |
| ·溶剂无明显效应浓度值的测定 | 第84页 |
| ·C6-HSL 对小球藻生长的影响 | 第84页 |
| ·C6-HSL 对小球藻抗氧化酶活性及 MDA 含量的影响 | 第84-86页 |
| ·统计分析 | 第86页 |
| 3 结果 | 第86-90页 |
| ·乙醇对小球藻 NOEC 值 | 第86-87页 |
| ·C6-HSL 对小球藻生长的影响 | 第87页 |
| ·C6-HSL 对小球藻细胞蛋白质含量的影响 | 第87-88页 |
| ·C6-HSL 对小球藻细胞抗氧化酶活性的影响 | 第88-89页 |
| ·C6-HSL 对小球藻细胞 MDA 含量的影响 | 第89-90页 |
| 4 讨论 | 第90-91页 |
| 5 小结 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-94页 |
| 第五章 群体感应信号分子对小球藻蛋白表达谱的影响 | 第94-112页 |
| 前言 | 第94-95页 |
| 1 材料 | 第95页 |
| ·无菌小球藻培养体系的建立 | 第95页 |
| ·药品和试剂 | 第95页 |
| ·实验设计 | 第95页 |
| 2 方法 | 第95-98页 |
| ·样品的收集 | 第95页 |
| ·蛋白的提取、浓度的测定及 SDS-PAGE | 第95-96页 |
| ·蛋白质酶解 | 第96页 |
| ·藻蛋白的 iTRAQ 标记 | 第96页 |
| ·藻蛋白的 SCX 分离 | 第96-97页 |
| ·基于 Triple TOF 5600 质谱仪的 LC-ESI-MS/MS 分析 | 第97页 |
| ·生物信息学分析 | 第97-98页 |
| 3 结果 | 第98-105页 |
| ·小球藻蛋白定量及电泳检测 | 第98-99页 |
| ·小球藻蛋白质的鉴定及表达谱变化分析 | 第99-105页 |
| 4 讨论 | 第105-108页 |
| 5 小结 | 第108-109页 |
| 参考文献 | 第109-112页 |
| 全文结论 | 第112-115页 |
| 1 主要结论 | 第112-113页 |
| 2 论文创新点 | 第113-114页 |
| 3 展望 | 第114-115页 |
| 附录 | 第115-117页 |
| 致谢 | 第117-118页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第118-120页 |
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