| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 论文中所使用英文缩略词列表 | 第8-11页 |
| 第一章 前言 | 第11-25页 |
| 1.1 温和病毒概述 | 第11-18页 |
| 1.1.1 温和病毒的定义和分类 | 第11-13页 |
| 1.1.2 温和病毒的生物学意义 | 第13-14页 |
| 1.1.3 温和噬菌体溶源裂解机理的研究进展 | 第14-18页 |
| 1.2 古生菌温和病毒概述 | 第18-23页 |
| 1.2.1 古生菌温和病毒的定义和分类 | 第18-20页 |
| 1.2.2 古生菌温和病毒的生物学意义 | 第20页 |
| 1.2.3 古生菌温和病毒溶源裂解机理的研究进展 | 第20-23页 |
| 1.3 本研究的背景、主要内容及意义 | 第23-25页 |
| 第二章 材料与方法 | 第25-47页 |
| 2.1 材料 | 第25-35页 |
| 2.1.1 菌株 | 第25页 |
| 2.1.2 质粒 | 第25-28页 |
| 2.1.3 PCR引物序列及其用途 | 第28-30页 |
| 2.1.4 实验仪器 | 第30-31页 |
| 2.1.5 药品及试剂 | 第31-32页 |
| 2.1.6 培养基的配制 | 第32-33页 |
| 2.1.7 溶液的配制 | 第33-35页 |
| 2.2 方法 | 第35-47页 |
| 2.2.1 大肠杆菌感受态的制备 | 第36页 |
| 2.2.2 大肠杆菌的转化方法 | 第36页 |
| 2.2.3 嗜盐古生菌的转化方法 | 第36-37页 |
| 2.2.4 一步法提质粒 | 第37页 |
| 2.2.5 质粒提取和胶回收的方法 | 第37页 |
| 2.2.6 嗜盐古生菌总RNA的提取 | 第37-38页 |
| 2.2.7 蛋白浓度的测定 | 第38-39页 |
| 2.2.8 SDS-PAGE检测蛋白 | 第39-40页 |
| 2.2.9 蛋白质免疫印迹(Western Blotting) | 第40-41页 |
| 2.2.10 SNJ1病毒的制备、扩增及其效价测定 | 第41-42页 |
| 2.2.11 病毒的分离纯化 | 第42页 |
| 2.2.12 SNJ1病毒基因组的提取 | 第42-43页 |
| 2.2.13 病毒裂解能力的比较 | 第43页 |
| 2.2.14 转录起始位点的检测 | 第43-44页 |
| 2.2.15 gp4的表达和纯化 | 第44-45页 |
| 2.2.16 序列分析方法 | 第45-46页 |
| 2.2.17 RT-qPCR检测基因转录水平 | 第46-47页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第47-73页 |
| 3.1 SNJ1病毒遗传操作系统的构建 | 第47-52页 |
| 3.1.1 构建全长穿梭载体SNJ1/pUC-pyrF | 第48-49页 |
| 3.1.2 检测全长穿梭载体的感染性 | 第49-52页 |
| 3.2 SNJ1病毒溶源调控相关基因的筛选和鉴定 | 第52-62页 |
| 3.2.1 CJ7/pYC-S经诱导产生的空斑病毒与浊斑病毒的性质研究 | 第52-55页 |
| 3.2.2 基于pYC-S确定orf4是SNJ1病毒溶源裂解转变的关键基因 | 第55-58页 |
| 3.2.3 基于pFJ6探究orf4对病毒侵染过程的影响 | 第58-62页 |
| 3.3 orf4的转录情况及其产物的性质研究 | 第62-73页 |
| 3.3.1 orf4转录起始位点的确定 | 第62-63页 |
| 3.3.2 orf4转录水平的检测 | 第63-65页 |
| 3.3.3 orf4预测编码蛋白gp4的同源性分析及其表达 | 第65-73页 |
| 总结 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-80页 |
| 硕士研究生期间科研成果及获奖情况 | 第80-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
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