摘要 | 第10-11页 |
ABSTRACT | 第11-12页 |
第一章 前言 | 第13-23页 |
1.1 葱属风味化学 | 第13-17页 |
1.1.1 葱属作物硫化物功能活性 | 第13-14页 |
1.1.2 葱属风味物质的形成伴随着次生代谢的过程 | 第14-15页 |
1.1.3 风味形成的相关酶类 | 第15-17页 |
1.2 H_2S的产生及新陈代谢途径 | 第17-19页 |
1.2.1 H_2S的生成途径 | 第17-18页 |
1.2.2 H_2S的新陈代谢途径 | 第18-19页 |
1.3 H_2S生理活性 | 第19-21页 |
1.3.1 H_2S—降血压 | 第19-20页 |
1.3.2 H_2S—神经调节 | 第20页 |
1.3.3 H_2S—炎症 | 第20-21页 |
1.3.4 H_2S—胃肠道调节作用 | 第21页 |
1.4 硫烷化作用 | 第21页 |
1.5 研究目的、主要内容 | 第21-23页 |
1.5.1 研究目的 | 第21-22页 |
1.5.2 研究内容 | 第22-23页 |
第二章 蒜酶的提取、纯化及酶活的测定 | 第23-28页 |
2.1 材料与方法 | 第23-26页 |
2.1.1 主要材料与试剂 | 第23页 |
2.1.2 主要仪器 | 第23页 |
2.1.3 实验方法 | 第23-26页 |
2.1.4 统计分析 | 第26页 |
2.2 结果与分析 | 第26-27页 |
2.2.1 蛋白纯化 | 第26-27页 |
2.2.2 酶活测定 | 第27页 |
2.3 本章小结 | 第27-28页 |
第三章 H_2S对蒜酶、L-乳酸脱氢酶、D-乳酸脱氢酶活性影响研究 | 第28-36页 |
3.1 材料与方法 | 第28-30页 |
3.1.1 主要材料与试剂 | 第28页 |
3.1.2 主要仪器 | 第28页 |
3.1.3 实验方法 | 第28-30页 |
3.1.4 统计分析 | 第30页 |
3.2 结果与分析 | 第30-34页 |
3.2.1 H_2S处理蒜酶、L-乳酸脱氢酶、D-乳酸脱氢酶活性影响结果分析 | 第30-32页 |
3.2.2 H_2S对蒜酶、L-乳酸脱氢酶、D-乳酸脱氢酶活性抑制与巯基的关系 | 第32-34页 |
3.3 讨论与结论 | 第34-36页 |
3.3.1 本章讨论 | 第34-35页 |
3.3.2 本章结论 | 第35-36页 |
第四章 H_2S作用于酶蛋白导致蛋白结构的变化 | 第36-45页 |
4.1 材料与方法 | 第36-37页 |
4.1.1 主要材料与试剂 | 第36页 |
4.1.2 主要仪器 | 第36页 |
4.1.3 实验方法 | 第36-37页 |
4.2 结果与分析 | 第37-42页 |
4.2.1 H_2S处理蒜酶及L-乳酸脱氢酶的SDS-PAGE结果分析 | 第37-39页 |
4.2.2 Na_2S/NaHS/PS溶液中S原子状态对D-乳酸脱氢酶蛋白的影响 | 第39-40页 |
4.2.3 L-乳酸脱氢酶、D-乳酸脱氢酶、蒜酶的圆二色谱分析 | 第40-42页 |
4.3 讨论与结论 | 第42-45页 |
4.3.1 本章讨论 | 第42-43页 |
4.3.2 本章结论 | 第43-45页 |
第五章 H_2S处理蒜酶及L-乳酸脱氢酶MALDI-TOF-MS/MS分析 | 第45-52页 |
5.1 材料与方法 | 第45-46页 |
5.1.1 主要材料与试剂 | 第45页 |
5.1.2 主要仪器 | 第45页 |
5.1.3 实验方法 | 第45-46页 |
5.2 结果与分析 | 第46-51页 |
5.2.1 H_2S处理蒜酶MALDI-TOF-MS/MS分析 | 第46-48页 |
5.2.2 H_2S处理L-乳酸脱氢酶MALDI-TOF-MS分析 | 第48-51页 |
5.3 讨论与结论 | 第51-52页 |
5.3.1 本章讨论 | 第51页 |
5.3.2 本章结论 | 第51-52页 |
第六章 全文总结与展望 | 第52-54页 |
6.1 全文总结 | 第52-53页 |
6.1.1 蒜酶的提取、纯化及酶活的测定 | 第52页 |
6.1.2 H_2S对蒜酶、L-乳酸脱氢酶、D-乳酸脱氢酶活性影响研究 | 第52页 |
6.1.3 H_2S作用于酶蛋白导致蛋白结构的变化 | 第52-53页 |
6.1.4 H_2S处理蒜酶及L-乳酸脱氢酶MALDI-TOF-MS/MS分析 | 第53页 |
6.2 研究展望 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-60页 |
致谢 | 第60-61页 |