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花生再生体系及AhGLB基因的遗传转化体系的建立 |
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| 论文目录 |
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| 摘要 | 第1-5页 | | Abstracts | 第5-9页 | | 第一章 绪论 | 第9-18页 | | 1 渍涝害概述 | 第9-10页 | | ·渍涝对花生的影响 | 第10页 | | 2 分子生态学 | 第10-11页 | | 3 非共生血红蛋白 | 第11-12页 | | ·植物非共生血红蛋白的研究 | 第11页 | | ·缺氧胁迫下GLB对植物的作用 | 第11-12页 | | ·非共生血红蛋白基因在植物中的作用 | 第12页 | | 4 基因沉默 | 第12-13页 | | 5 植物遗传转化中常用的技术 | 第13-17页 | | ·花生组织培养与植株再生 | 第13-15页 | | ·花生遗传转化的方法 | 第15-16页 | | ·转基因植物的鉴定方法 | 第16-17页 | | 6 研究目的、意义 | 第17-18页 | | 第二章 花生再生体系的建立 | 第18-25页 | | 1 实验材料与方法 | 第18-21页 | | ·实验材料 | 第18页 | | ·实验器材 | 第18页 | | ·实验试剂 | 第18-20页 | | ·实验方法 | 第20-21页 | | ·统计方法 | 第21页 | | 2 结果与分析 | 第21-23页 | | ·6-BA和NAA不同激素配比下对再生芽诱导的影响 | 第21-22页 | | ·不定芽伸长及植株成苗 | 第22页 | | ·再生苗的生根 | 第22-23页 | | 3 小结与讨论 | 第23-25页 | | 第三章 AhGLB基因遗传转化体系的建立 | 第25-52页 | | 1 材料与试剂 | 第25-28页 | | ·实验材料 | 第25页 | | ·实验材料 | 第25-26页 | | ·实验试剂及所用培养基 | 第26-28页 | | ·实验所用软件 | 第28页 | | 2 实验方法 | 第28-43页 | | ·载体构建 | 第28-35页 | | ·卡那霉素浓度筛选 | 第35页 | | ·农杆菌介导的烟草遗传转化 | 第35-36页 | | ·花生的遗传转化研究 | 第36-38页 | | ·转基因植株的分子鉴定 | 第38-42页 | | ·AhGLB基因表达分析 | 第42-43页 | | 3 结果与分析 | 第43-50页 | | ·AhGLB基因全长片段 | 第43-44页 | | ·载体构建结果 | 第44-46页 | | ·卡那霉素对再生苗的影响 | 第46-47页 | | ·转基因植株PCR结果 | 第47-48页 | | ·转基因植株Southern Blot检测 | 第48页 | | ·转基因荧光定量PCR结果 | 第48-50页 | | 4 小结与讨论 | 第50-52页 | | 第四章 结论、创新与展望 | 第52-54页 | | 1 全文结论 | 第52-53页 | | ·花生高效再生体系的建立 | 第52页 | | ·花生遗传转化的研究 | 第52-53页 | | 2 主要创新点 | 第53页 | | ·建立花生高效再生体系 | 第53页 | | ·成功将耐渍涝相关基因转入花生体内 | 第53页 | | 3 研究展望 | 第53-54页 | | ·基因功能和表达的深入研究分析 | 第53页 | | ·耐涝品种培育 | 第53页 | | ·转基因植株对生态环境的影响研究 | 第53-54页 | | 参考文献 | 第54-59页 | | 附录 | 第59-63页 | | 致谢 | 第63-64页 | | 个人简介 | 第64页 |
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论文编号BS2299743，这篇论文共64页
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