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裂片石莼多糖的提取分离、结构及抗凝血活性研究 |
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| 摘要 | 第6-8页 | | Abstract | 第8-14页 | | 前言 | 第14-25页 | | 1 绿藻多糖生物活性研究 | 第15-18页 | | 1.1 抗凝血活性 | 第15-16页 | | 1.2 免疫调节活性 | 第16页 | | 1.3 抗病毒活性 | 第16-17页 | | 1.4 降血脂活性 | 第17页 | | 1.5 抗氧化活性 | 第17页 | | 1.6 抗肿瘤活性 | 第17-18页 | | 2 绿藻多糖的结构研究 | 第18-20页 | | 2.1 木糖-阿拉伯糖-半乳糖聚合物 | 第18-19页 | | 2.2 葡萄糖醛酸-木糖-鼠李糖聚合物 | 第19-20页 | | 3 多糖的结构研究方法 | 第20-24页 | | 3.1 多糖的一级结构研究 | 第20-23页 | | 3.1.1 化学方法 | 第20页 | | 3.1.2 仪器分析方法 | 第20-23页 | | 3.1.2.1 紫外光谱(UV) | 第21页 | | 3.1.2.2 红外光谱(IR) | 第21页 | | 3.1.2.3 气相色谱(GC)和高效液相色谱(HPLC) | 第21页 | | 3.1.2.4 高效阴离子交换色谱(HPIC) | 第21-22页 | | 3.1.2.5 质谱(MS) | 第22页 | | 3.1.2.6 电泳(CE) | 第22页 | | 3.1.2.7 核磁共振波谱(NMR) | 第22-23页 | | 3.1.3 生物学方法 | 第23页 | | 3.2 多糖高级结构的测定 | 第23-24页 | | 4 本课题立体背景与研究意义 | 第24-25页 | | 第一章 裂片石莼多糖的提取和理化性质研究 | 第25-36页 | | 1 材料和仪器 | 第25-26页 | | 1.1 实验原料 | 第25页 | | 1.2 主要实验试剂和材料 | 第25页 | | 1.3 主要实验仪器 | 第25-26页 | | 2 实验方法 | 第26-30页 | | 2.1 裂片石莼粗多糖的提取 | 第26-27页 | | 2.1.1 室温水提取 | 第26页 | | 2.1.3 热水提取 | 第26-27页 | | 2.2 理化性质分析 | 第27-29页 | | 2.2.1 总糖含量测定 | 第27-28页 | | 2.2.2 蛋白质含量测定 | 第28页 | | 2.2.3 硫酸基含量测定 | 第28-29页 | | 2.2.4 糖醛酸含量测定 | 第29页 | | 2.3 单糖组成分析 | 第29-30页 | | 3 实验结果与讨论 | 第30-35页 | | 3.1 裂片石莼粗多糖的提取 | 第30页 | | 3.2 理化性质分析 | 第30-33页 | | 3.2.1 总糖含量的测定 | 第30-31页 | | 3.2.2 蛋白质含量的测定 | 第31-32页 | | 3.2.3 硫酸基含量测定 | 第32页 | | 3.2.4 糖醛酸含量测定 | 第32-33页 | | 3.3 单糖组成分析 | 第33-35页 | | 4 本章小结 | 第35-36页 | | 第二章 裂片石莼多糖的分离纯化和化学组成研究 | 第36-53页 | | 1 材料和仪器 | 第36-37页 | | 1.1 实验原料 | 第36页 | | 1.2 主要实验试剂及色谱材料 | 第36页 | | 1.3 主要实验仪器 | 第36-37页 | | 2 实验方法 | 第37-39页 | | 2.1 裂片石莼多糖的分离纯化 | 第37-38页 | | 2.1.1 离子交换柱层析 | 第37-38页 | | 2.1.2 凝胶渗透柱层析 | 第38页 | | 2.2 纯度分析和相对分子质量测定 | 第38页 | | 2.3 理化性质分析 | 第38-39页 | | 2.4 单糖组成测定 | 第39页 | | 3 实验结果与讨论 | 第39-52页 | | 3.1 裂片石莼多糖的分离纯化 | 第39-42页 | | 3.1.1 离子交换柱层析 | 第39-40页 | | 3.1.2 凝胶渗透柱层析 | 第40-42页 | | 3.2 纯度分析和分子量测定 | 第42-46页 | | 3.3 理化性质分析 | 第46-48页 | | 3.4 单糖组成测定 | 第48-52页 | | 4 本章小结 | 第52-53页 | | 第三章 裂片石莼多糖 HP1S 和 HP2S 的结构研究 | 第53-80页 | | 1 材料和仪器 | 第53-54页 | | 1.1 实验原料 | 第53页 | | 1.2 主要实验试剂及色谱材料 | 第53页 | | 1.3 主要实验仪器 | 第53-54页 | | 2 实验方法 | 第54-57页 | | 2.1 红外光谱分析 | 第54页 | | 2.2 脱硫酸基反应 | 第54-55页 | | 2.2.1 实验试剂处理 | 第54页 | | 2.2.2 多糖吡啶盐的制备 | 第54页 | | 2.2.3 脱硫酸基反应 | 第54-55页 | | 2.3 甲基化分析 | 第55-57页 | | 2.3.1 试剂的处理 | 第55页 | | 2.3.2 甲基化反应 | 第55-56页 | | 2.3.3 甲基化多糖的酸水解 | 第56页 | | 2.3.4 水解产物的还原 | 第56页 | | 2.3.5 还原样品的乙酰化 | 第56页 | | 2.3.6 GC-MS 分析 | 第56-57页 | | 2.4 核磁共振波谱分析 | 第57页 | | 3 实验结果与讨论 | 第57-79页 | | 3.1 红外光谱分析 | 第57-58页 | | 3.2 脱硫酸基反应 | 第58-59页 | | 3.3 甲基化分析 | 第59-70页 | | 3.3.1 甲基化的原理 | 第59-60页 | | 3.3.2 甲基化程度的确定 | 第60-61页 | | 3.3.3 多糖 HP1S 和 ds-HP1S 的气质分析 | 第61-68页 | | 3.3.4 多糖 HP2S 和 ds-HP2S 的气质分析 | 第68-70页 | | 3.4 核磁共振波谱分析 | 第70-79页 | | 3.4.1 多糖 ds-HP1S 核磁共振波谱分析 | 第70-77页 | | 3.4.2 多糖 HP1S 核磁共振波谱分析 | 第77-79页 | | 4 本章小结 | 第79-80页 | | 第四章 裂片石莼多糖抗凝血活性研究 | 第80-85页 | | 1 材料与仪器 | 第80页 | | 1.1 实验材料 | 第80页 | | 1.2 实验试剂 | 第80页 | | 1.3 实验仪器 | 第80页 | | 2 实验方法 | 第80-81页 | | 2.1 血浆的分离 | 第80页 | | 2.2 活化部分凝血活酶时间(APTT)的测定 | 第80-81页 | | 2.3 凝血酶原时间(PT)的测定 | 第81页 | | 2.4 凝血酶时间(TT)的测定 | 第81页 | | 3 实验结果与讨论 | 第81-84页 | | 4 本章小结 | 第84-85页 | | 结语 | 第85-87页 | | 参考文献 | 第87-94页 | | 致谢 | 第94-95页 | | 个人简历 | 第95页 | | 发表的学术论文 | 第95-96页 |
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论文编号BS3742193，这篇论文共96页
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