| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词表 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第1章 综述 骨发育过程中VEGF的多种功能 | 第14-18页 |
| 1.1 VEGF及受体 | 第14页 |
| 1.2 VEGF在骨骼发育中的作用 | 第14-17页 |
| 1.2.1 VEGF通过促进血管生成来促进成骨 | 第15页 |
| 1.2.2 VEGF是软骨细胞存活的关键因素 | 第15-16页 |
| 1.2.3 VEGF在成骨细胞功能中的作用 | 第16页 |
| 1.2.4 VEGF有助于通过促进成骨分化和抑制成脂分化来维持骨内稳态 | 第16页 |
| 1.2.5 VEGF受其他因素调控 | 第16-17页 |
| 1.3 总结与展望 | 第17-18页 |
| 第2章 多层缓释微球型支架的制备 | 第18-25页 |
| 2.1 主要仪器和材料名称及产地 | 第18-19页 |
| 2.2 实验试剂的配制 | 第19页 |
| 2.3 实验方法 | 第19-21页 |
| 2.3.1 设置VEGF浓度梯度 | 第19页 |
| 2.3.2 微球制备方法 | 第19-20页 |
| 2.3.3 微球无菌性验证 | 第20页 |
| 2.3.4 支架的制备方法 | 第20-21页 |
| 2.4 结果 | 第21-22页 |
| 2.4.1 多层缓释微球的形态 | 第21-22页 |
| 2.4.2 无菌性验证 | 第22页 |
| 2.4.3 微球型支架的制备 | 第22页 |
| 2.5 讨论 | 第22-25页 |
| 第3章 人胎盘源间充质干细胞的分离、培养及鉴定 | 第25-32页 |
| 3.1 实验材料 | 第25-27页 |
| 3.1.1 主要仪器、材料名称和产地 | 第25-26页 |
| 3.1.2 实验试剂的配制 | 第26-27页 |
| 3.2 实验方法 | 第27-29页 |
| 3.2.1 原代HPMSCs的培养 | 第27页 |
| 3.2.2 HPMSCs的传代培养 | 第27-28页 |
| 3.2.3 HPMSCs冻存 | 第28页 |
| 3.2.4 HPMSCs复苏 | 第28页 |
| 3.2.5 HPMSCs成骨诱导分化和茜素红染色 | 第28-29页 |
| 3.2.6 HPMSCs成脂诱导分化和油红O染色 | 第29页 |
| 3.3 结果 | 第29-31页 |
| 3.3.1 HPMSCs的形态及生长状况 | 第29-30页 |
| 3.3.2 HPMSCs的成骨诱导茜素红染色 | 第30页 |
| 3.3.3 HPMSCs的成脂诱导油红O染色 | 第30-31页 |
| 3.4 讨论 | 第31-32页 |
| 第4章 载有不同浓度VEGF的微球型支架对HPMSCS增殖、成骨活性的影响以及细胞在支架上的黏附 | 第32-44页 |
| 4.1 主要仪器、材料名称和产地 | 第32-33页 |
| 4.2 实验试剂的配制 | 第33-34页 |
| 4.3 实验方法 | 第34-38页 |
| 4.3.1 载有不同浓度VEGF的微球型支架对HPMSCs增殖活性的影响 | 第34-35页 |
| 4.3.2 载有不同浓度VEGF的微球型支架对HPMSCs成骨活性的影响 | 第35-37页 |
| 4.3.3 细胞在支架上的黏附 | 第37页 |
| 4.3.4 统计学分析 | 第37-38页 |
| 4.4 结果 | 第38-42页 |
| 4.4.1 载有不同浓度VEGF的微球型支架对HPMSCs增殖活性的影响 | 第38-39页 |
| 4.4.2 载有不同浓度VEGF的微球型支架对HPMSCs成骨活性的影响 | 第39-42页 |
| 4.4.3 细胞在支架上的黏附 | 第42页 |
| 4.5 讨论 | 第42-44页 |
| 第5章 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-52页 |
| 作者简介 | 第52-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
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