摘要 | 第5-8页 |
ABSTRACT | 第8-9页 |
符号说明 | 第13-17页 |
第1章 绪论 | 第17-27页 |
参考文献 | 第20-27页 |
第2章 血清MIRNAS表达谱在胰腺癌相关性糖尿病中的诊断价值 | 第27-46页 |
2.1 引言 | 第27-28页 |
2.2 材料和方法 | 第28-36页 |
2.2.1 研究对象和血样收集 | 第28-29页 |
2.2.2 仪器与试剂 | 第29-31页 |
2.2.3 实验方法 | 第31-36页 |
2.3 实验结果 | 第36-42页 |
2.3.1 PaC-DM与单纯2型DM患者及正常对照血清miRNA的差异表达 | 第36-37页 |
2.3.2 PaC-DM患者特异血清miRNA表达谱的复筛 | 第37-38页 |
2.3.3 PaC-DM患者特异血清miRNA表达谱的验证 | 第38-40页 |
2.3.4 PaC-DM患者血清CA199的含量及ROC曲线分析 | 第40-41页 |
2.3.5 PaC-DM患者血清MV提取及miRNAs检测 | 第41页 |
2.3.6 PaC-DM患者血清胰岛素的测定 | 第41-42页 |
2.4 讨论 | 第42-44页 |
参考文献 | 第44-46页 |
第3章 胰腺癌细胞分泌MV包裹的miR-19a靶向调节NeuroD1对胰岛细胞功能的影响 | 第46-67页 |
3.1 引言 | 第46-47页 |
3.2 实验材料与方法 | 第47-55页 |
3.2.1 细胞与试剂 | 第47-48页 |
3.2.2 实验方法 | 第48-55页 |
3.2.2.1 细胞的培养 | 第48-49页 |
3.2.2.2 细胞培养液中MV的提取 | 第49页 |
3.2.2.3 MV中RNA的提取 | 第49-50页 |
3.2.2.4 细胞中RNA的抽提 | 第50页 |
3.2.2.5 mi RNA 的 q RT-PCR 定量检测 | 第50页 |
3.2.2.6 预测miRNA的靶位点 | 第50-51页 |
3.2.2.7 miRNA的过表达和干扰实验 | 第51-52页 |
3.2.2.8 Western blotting检测 | 第52-53页 |
3.2.2.9 原代小鼠胰岛的提取 | 第53-54页 |
3.2.2.10 胰岛素耐量测试 | 第54页 |
3.2.2.11 数值的统计分析 | 第54页 |
3.2.2.12 试剂配置 | 第54-55页 |
3.3 实验结果 | 第55-63页 |
3.3.1 胰腺癌细胞分泌的MV可以包裹miR | 第55-56页 |
3.3.2 胰腺癌细胞分泌的MV对MIN6及原代胰岛细胞功能的影响 | 第56-58页 |
3.3.3 胰腺癌细胞分泌的miR | 第58-62页 |
3.3.4 miR-19a通过调控NeuroD1表达对MIN6及原代胰岛细胞功能的影响 | 第62-63页 |
3.4 讨论 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-67页 |
第4章 胰腺癌细胞通过分泌MV促进胰岛细胞凋亡 | 第67-76页 |
4.1 引言 | 第67-68页 |
4.2 实验材料与方法 | 第68-70页 |
4.2.1 实验材料 | 第68-69页 |
4.2.2 实验方法 | 第69-70页 |
4.3 实验结果 | 第70-73页 |
4.3.1 胰腺癌细胞分泌的MV对胰岛 ! 细胞形态的影响 | 第70-71页 |
4.3.2 胰腺癌细胞分泌的MV对胰岛 ! 细胞凋亡的影响 | 第71-73页 |
4.4 讨论 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-76页 |
第5章 胰腺癌对植瘤小鼠糖代谢及胰岛NEUROD1蛋白表达的影响 | 第76-87页 |
5.1 引言 | 第76-77页 |
5.2 材料和方法 | 第77-81页 |
5.2.1 实验材料 | 第77页 |
5.2.2 实验动物 | 第77页 |
5.2.3 主要试剂 | 第77-78页 |
5.2.4 主要仪器 | 第78页 |
5.2.5 实验方法 | 第78-81页 |
5.3 实验结果 | 第81-84页 |
5.3.1 胰腺癌细胞皮下植瘤可造成植瘤小鼠的糖耐量损伤 | 第81-82页 |
5.3.2 胰腺癌植瘤对小鼠胰岛功能及Neurod1表达水平的影响 | 第82-83页 |
5.3.3 胰腺癌植瘤小鼠血清中的miR | 第83-84页 |
5.3.4 胰腺癌植瘤小鼠血清中的胰岛素水平上调 | 第84页 |
5.4 讨论 | 第84-85页 |
参考文献 | 第85-87页 |
结论 | 第87-88页 |
附录 | 第88-96页 |
参考文献 | 第93-96页 |
致谢 | 第96-98页 |
学术论文和科研成果目录 | 第98页 |