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Schizosaccharomyces pombe cdc2基因在产能微藻中的克隆与表达 |
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论文目录 |
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摘要 | 第1-5页 | Abstract | 第5-9页 | 前言 | 第9-11页 | 第一章 文献综述 | 第11-18页 | ·能源微藻及微藻生物柴油 | 第11-15页 | ·生物能源 | 第11页 | ·生物柴油 | 第11页 | ·微藻柴油及其优势 | 第11-13页 | ·各国微藻生物柴油研究现状 | 第13-15页 | ·cdc2基因和p34~(cdc2) | 第15-16页 | ·cdc2基因 | 第15页 | ·p34~(cdc2)的结构、功能与调节 | 第15-16页 | ·微藻的外源DNA导入方法现状 | 第16页 | ·本论文研究的内容和意义 | 第16-18页 | ·本论文研究的主要内容 | 第16页 | ·本论文研究的意义 | 第16-18页 | 第二章 材料与方法 | 第18-32页 | ·实验材料 | 第18-24页 | ·菌种和质粒 | 第18页 | ·试剂与仪器 | 第18-20页 | ·主要试剂 | 第18-20页 | ·主要仪器 | 第20页 | ·PCR引物 | 第20-21页 | ·培养基和培养条件 | 第21-23页 | ·S.pombe的培养基和培养条件 | 第21页 | ·E coli DH5α的培养基和培养条件 | 第21-22页 | ·Navicula sp.的培养基和培养条件 | 第22-23页 | ·缓冲溶液和储备液 | 第23-24页 | ·电泳缓冲液 | 第23页 | ·质粒提取溶液 | 第23页 | ·Buffer B溶液 | 第23页 | ·微藻基因组提取溶液 | 第23-24页 | ·实验方法 | 第24-32页 | ·S.pombe母基因组DNA提取方法 | 第24-26页 | ·酵母基因组DNA提取试剂盒提取法 | 第24页 | ·酵母裂解液提取法 | 第24-25页 | ·石英砂破胞提取法 | 第25页 | ·S.pombe基因组DNA提取质量的检测 | 第25-26页 | ·S.pombe cdc2基因的克隆 | 第26-27页 | ·cdc2基因的克隆 | 第26页 | ·PCR反应体系和反应条件 | 第26页 | ·SanPrep柱式DNA胶回收试剂盒的操作方法 | 第26-27页 | ·表达载体构建 | 第27-29页 | ·菌种的活化 | 第27页 | ·碱法提取质粒pBI121 | 第27-28页 | ·重组载体的构建 | 第28页 | ·感受态细胞的制备 | 第28-29页 | ·感受态细胞的转化 | 第29页 | ·重组载体的验证 | 第29页 | ·重组载体在电转化舟形藻中的表达 | 第29-31页 | ·舟形藻细胞密度的测定方法 | 第29-30页 | ·舟形藻电转化方法 | 第30页 | ·舟形藻细胞转化效率的检测 | 第30页 | ·重组载体在电转化舟形藻中表达情况的检测 | 第30-31页 | ·转基因成功的舟形藻测定方法 | 第31-32页 | ·生长曲线的测定 | 第31页 | ·单位时间内产油量的测定 | 第31-32页 | 第三章 结果与讨论 | 第32-52页 | ·S.pombe cdc2基因的克隆 | 第32-37页 | ·S.pombe基因组DNA的提取 | 第32-33页 | ·S.pombe cdc2基因的克隆 | 第33-34页 | ·粟酒裂殖酵母cdc2基因的单克隆测序 | 第34-37页 | ·pBI121表达载体的构建 | 第37-46页 | ·表达载体构建的质粒图谱 | 第37-38页 | ·含有表达载体质粒pBI121大肠杆菌的活化 | 第38-39页 | ·碱法提取表达载体质粒pB1121 | 第39-40页 | ·重组表达载体的构建 | 第40-46页 | ·表达载体质粒pBI121和目的基因cdc2的双酶切 | 第40-44页 | ·表达载体质粒pBI121和目的基因cdc2的连接 | 第44-46页 | ·重组载体在电转化舟形藻中的表达 | 第46-48页 | ·舟形藻细胞密度的测定 | 第46-47页 | ·舟形藻细胞转化效率的检测 | 第47-48页 | ·重组载体在电转化舟形藻中表达情况的检测 | 第48页 | ·转基因成功的舟形藻测定方法 | 第48-50页 | ·生长曲线的测定 | 第48-49页 | ·单位时间内产油量的测定 | 第49-50页 | ·讨论 | 第50-52页 | ·S.pombe基因组DNA的提取方法 | 第50页 | ·构建载体过程中酶切位点的选择 | 第50页 | ·大肠杆菌的连接转化过程 | 第50-52页 | 第四章 结论 | 第52-53页 | 参考文献 | 第53-57页 | 致谢 | 第57页 |
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