摘要 | 第6-7页 |
Abstract | 第7页 |
缩略语索引 | 第12-13页 |
第一章 绪论 | 第13-33页 |
1.1 糖尿病下肢动脉硬化闭塞症 | 第13-21页 |
1.1.1 糖尿病下肢动脉硬化闭塞症简介 | 第13-14页 |
1.1.2 糖尿病下肢动脉硬化闭塞症的主要病理改变 | 第14页 |
1.1.3 糖尿病下肢动脉硬化闭塞症的病理分期、诊断及治疗现状 | 第14-16页 |
1.1.4 治疗药物 | 第16-19页 |
1.1.5 下肢动脉硬化闭塞症发病机制 | 第19-21页 |
1.1.6 糖尿病下肢动脉硬化闭塞症发病的分子机制 | 第21页 |
1.2 C型利钠肽 | 第21-23页 |
1.2.1 C型利钠肽及其受体 | 第21-22页 |
1.2.2 C型利钠肽的生理作用及其代谢 | 第22-23页 |
1.3 c型利钠肽影响糖尿病下肢闭塞症的作用机制 | 第23-31页 |
1.3.1 Akt/PKB下游通路与糖尿病下肢动脉闭塞症 | 第23-27页 |
1.3.2 Erk1/2下游通路与糖尿病下肢动脉闭塞症 | 第27-29页 |
1.3.3 C型利钠肽与内皮素-1在糖尿病下肢动脉硬化中的相互关系 | 第29页 |
1.3.4 C型利钠肽的产生与肿瘤坏死因子、白介素的作用关系 | 第29-31页 |
1.4 糖尿病动物模型的建立 | 第31-32页 |
1.5 本论文研究意义 | 第32-33页 |
第二章 RT-PCR方法克隆小鼠C型利钠肽基因 | 第33-43页 |
2.1 引言 | 第33-34页 |
2.2 实验方案 | 第34页 |
2.3 实验材料和方法 | 第34-40页 |
2.3.1 实验小鼠 | 第34页 |
2.3.2 引物设计 | 第34-35页 |
2.3.3 实验试剂 | 第35页 |
2.3.4 实验器材 | 第35-36页 |
2.3.5 试剂配方 | 第36页 |
2.3.6 反应体系 | 第36-37页 |
2.3.7 实验方法 | 第37-40页 |
2.4 实验结果讨论 | 第40-41页 |
2.4.1 总RNA电泳检测 | 第40页 |
2.4.2 RNA纯度测定 | 第40页 |
2.4.3 RT-PCR电泳结果检测 | 第40-41页 |
2.5 实验小结 | 第41-43页 |
第三章 构建pEGFP-C1-nppc质粒 | 第43-53页 |
3.1 引言 | 第43页 |
3.2 实验方案 | 第43-44页 |
3.3 实验材料和方法 | 第44-50页 |
3.3.1 实验载体和菌株 | 第44-45页 |
3.3.2 实验试剂 | 第45页 |
3.3.3 实验器材 | 第45页 |
3.3.4 反应体系 | 第45-46页 |
3.3.5 培养基配方 | 第46-47页 |
3.3.6 实验方法 | 第47-50页 |
3.4 实验结果讨论 | 第50-52页 |
3.4.1 重组质粒双酶切电泳检测 | 第50页 |
3.4.2 测序结果 | 第50-52页 |
3.5 实验小结 | 第52-53页 |
第四章 细胞转染及实时定量PCR | 第53-61页 |
4.1 引言 | 第53页 |
4.2 实验方案 | 第53-54页 |
4.3 实验材料和方法 | 第54-56页 |
4.3.1 引物设计 | 第54页 |
4.3.2 实验试剂 | 第54页 |
4.3.3 实验器材 | 第54-55页 |
4.3.4 反应体系 | 第55-56页 |
4.4 实验方法 | 第56-58页 |
4.5 实验结果讨论 | 第58-59页 |
4.6 实验小结 | 第59-61页 |
第五章 细胞转染及western blot | 第61-70页 |
5.1 引言 | 第61页 |
5.2 实验方案 | 第61-62页 |
5.3 实验材料和方法 | 第62-65页 |
5.3.1 实验试剂 | 第62页 |
5.3.2 试剂配方 | 第62-65页 |
5.4 实验方法 | 第65-67页 |
5.5 实验结果讨论 | 第67-68页 |
5.5.1 蛋白含量测定 | 第67-68页 |
5.5.2 western blot结果 | 第68页 |
5.6 实验小结 | 第68-70页 |
第六章 总结与展望 | 第70-72页 |
致谢 | 第72-73页 |
参考文献 | 第73-81页 |
附录A | 第81页 |