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水曲柳成花性别差异研究及开花基因表达分析 |
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论文目录 |
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摘要 | 第4-6页 | Abstract | 第6-8页 | 1 绪论 | 第17-31页 | 1.1 引言 | 第17页 | 1.2 开花物候研究 | 第17-21页 | 1.2.1 物候的概念 | 第17页 | 1.2.2 国内外开花物候研究进展 | 第17-19页 | 1.2.3 影响开花物候的因素 | 第19-21页 | 1.3 低温胁迫对开花的生理学研究进展 | 第21-23页 | 1.3.1 低温胁迫对植物细胞膜系统稳定性的影响 | 第21页 | 1.3.2 低温胁迫对植物渗透调节物质的影响 | 第21-22页 | 1.3.3 低温胁迫对植物保护酶活性的影响 | 第22页 | 1.3.4 低温胁迫对植物钙离子 | 第22-23页 | 1.4 植物花发育研究进展 | 第23-26页 | 1.4.1 植物开花研究历史和现状 | 第23页 | 1.4.2 成花诱导途径 | 第23-26页 | 1.5 植物内源激素及非生物胁迫对开花的影响 | 第26-28页 | 1.5.1 植物内源激素对植物开花的影响 | 第26页 | 1.5.2 非生物胁迫对植物开花的影响 | 第26-27页 | 1.5.3 开花整合因子 | 第27页 | 1.5.4 花器官的发育 | 第27-28页 | 1.6 木本植物成花研究进展及展望 | 第28-29页 | 1.7 水曲柳研究现状 | 第29页 | 1.7.1 水曲柳生物学特性 | 第29页 | 1.7.2 水曲柳开花研究进展及存在的问题 | 第29页 | 1.8 本论文研究的目的意义 | 第29-31页 | 2 水曲柳雌雄花物候研究 | 第31-49页 | 2.1 实验材料与方法 | 第31-33页 | 2.1.1 实验地生境概况 | 第31-32页 | 2.1.2 实验材料 | 第32页 | 2.1.3 实验方法 | 第32-33页 | 2.2 实验结果与分析 | 第33-46页 | 2.2.1 水曲柳雌雄花序开花生长及形态 | 第33-37页 | 2.2.2 水曲柳雌雄单花发育及形态 | 第37-41页 | 2.2.3 水曲柳个体及群体开花物候观测 | 第41-44页 | 2.2.4 水曲柳花粉活力及结实率 | 第44-45页 | 2.2.5 物候指数与生殖成功的相关性分析 | 第45-46页 | 2.3 讨论 | 第46-47页 | 2.4 本章小结 | 第47-49页 | 3 水曲柳雌雄花形态发育研究 | 第49-63页 | 3.1 实验材料与方法 | 第49-50页 | 3.1.1 材料的采集和固定 | 第49页 | 3.1.2 花序、花的体视显微观察 | 第49-50页 | 3.1.3 显微切片准备及观察 | 第50页 | 3.2 结果与分析 | 第50-60页 | 3.2.1 水曲柳雌雄花枝观察 | 第50-51页 | 3.2.2 水曲柳雌雄花序、花形态观察 | 第51-52页 | 3.2.3 水曲柳雄花的发生与发育 | 第52-56页 | 3.2.4 水曲柳雌花的发生与发育 | 第56-59页 | 3.2.5 水曲柳雌花发育时空对应关系 | 第59-60页 | 3.3 讨论 | 第60-62页 | 3.4 本章小结 | 第62-63页 | 4 水曲柳花器官发育中生理生化及相关基因表达差异研究 | 第63-86页 | 4.1 材料与方法 | 第63-71页 | 4.1.1 材料 | 第63-64页 | 4.1.2 主要设备仪器 | 第64页 | 4.1.3 主要试剂 | 第64-65页 | 4.1.4 酶活性检测 | 第65-67页 | 4.1.5 渗透调节物质检测 | 第67-68页 | 4.1.6 丙二醛(MDA)测定 | 第68页 | 4.1.7 钙离子测定 | 第68页 | 4.1.8 植物激素提取及检测 | 第68-69页 | 4.1.9 荧光定量PCR检测 | 第69-71页 | 4.1.10 数据分析 | 第71页 | 4.2 结果与分析 | 第71-80页 | 4.2.1 膜氧化和渗透指数的性别差异 | 第71-72页 | 4.2.2 抗氧化酶活性的性别差异 | 第72-73页 | 4.2.3 钙离子含量性别差异 | 第73-74页 | 4.2.4 水曲柳雌雄花发育过程中内源激素含量差异分析 | 第74-75页 | 4.2.5 总RNA纯度及浓度检测 | 第75-76页 | 4.2.6 内参基因的筛选 | 第76-77页 | 4.2.7 基因特异性引物PCR验证 | 第77页 | 4.2.8 开花相关基因性别差异表达分析 | 第77-80页 | 4.3 讨论 | 第80-84页 | 4.4 本章小结 | 第84-86页 | 5 水曲柳雌雄花对低温胁迫差异响应研究 | 第86-99页 | 5.1 材料与方法 | 第86-87页 | 5.1.1 实验材料 | 第86页 | 5.1.2 气象数据的获得 | 第86-87页 | 5.1.3 低温胁迫实验 | 第87页 | 5.1.4 主要设备仪器 | 第87页 | 5.1.5 主要试剂 | 第87页 | 5.1.6 实验方法 | 第87页 | 5.2 结果与分析 | 第87-96页 | 5.2.1 低温胁迫下膜氧化和渗透指数的性别差异 | 第87-89页 | 5.2.2 低温胁迫下抗氧化酶活性的性别差异 | 第89-91页 | 5.2.3 低温胁迫下钙离子含量性别差异 | 第91-92页 | 5.2.4 ROS清除、钙离子信号通路、冷胁迫及DNA甲基化相关基因的差异表达 | 第92-96页 | 5.3 讨论 | 第96-97页 | 5.4 本章小结 | 第97-99页 | 6 水曲柳开花基因CO、FT、AP2与PI的克隆及生物信息学分析 | 第99-112页 | 6.1 实验材料与方法 | 第99-102页 | 6.1.1 实验材料 | 第99页 | 6.1.2 实验方法 | 第99-102页 | 6.2 结果与分析 | 第102-109页 | 6.2.1 水曲柳总RNA的提取 | 第102-103页 | 6.2.2 水曲柳CO基因克隆与分析 | 第103-104页 | 6.2.3 水曲柳AP2基因克隆与分析 | 第104-106页 | 6.2.4 水曲柳PI基因克隆与分析 | 第106-108页 | 6.2.5 水曲柳FT基因克隆与分析 | 第108-109页 | 6.3 讨论 | 第109-111页 | 6.4 本章小结 | 第111-112页 | 结论 | 第112-114页 | 参考文献 | 第114-130页 | 附录 | 第130-141页 | 攻读学位期间发表的学术论文 | 第141-142页 | 致谢 | 第142-144页 | 附件 | 第144-145页 |
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